Biopolym. Cell. 1991; 7(5):62-65.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.0002F4
Клітинна біологія
Соматична гібридизація в роді Brassica: одержання гібридів між рапсом (Brassica napus L.) і гірчицею чорною (Brassica nigra L.)
1Сахно Л. О., 1Череп М. М., 1Скаржинська М. В., 1Глеба Ю. Ю.
  1. Інститут клітинної біології та генетичної інженерії АН УСРС
    Київ, СРСР

Abstract

Методом соматичної гібридизації гіпокотильних протопластів В. napus і мезофільних В. nigra із застосуванням подвійної інактивації одержано три клони рослин-регенерантів, що об'єднують в собі три геноми Brassica (A, B, С). Гібридність ядра підтверджується біохімічним (множинні молекулярні форми амілаз, естераз і аспартатамінотрансфераз) та морфолого-фізіологчним аналізами. Дослідження рестриктів хлоропластної ДНК виявило наявність у клонів рослин пластому ріпака. Одержані гібриди ріпак + гірчиця викликають інтерес в плані вивчення міжгеномної взаємодії в межах роду Brassica, а також мають практичну цінність як вихідний матеріал для селекції.
Повний текст: (PDF, російською)

References

[1] UN. Genome analysis in Brassica with special reference to the experimental formation of B. napus and peculiar mode to fertilization. Jap J Bot; 1935; 7(3):389-452.
[2] Sjödin C, Glimelius K. Screening for Resistance to Blackleg Phoma lingam (Tode ex Fr.) Desm. within Brassicaceae. J Phytopathol. 1988;123(4):322–32.
[3] Sacristán MD, Gerdemann-Knörck M, Schieder O. Incorporation of hygromycin resistance in Brassica nigra and its transfer to B. napus through asymmetric protoplast fusion. Theor Appl Genet. 1989;78(2):194-200.
[4] Sjödin C, Glimelius K. Brassica naponigra, a somatic hybrid resistant to Phoma lingam. Theor Appl Genet. 1989;77(5):651-6.
[5] Sakhno LA, Skarzhinskaya MV. Plant regeneration from isolated protoplasts of Brassica. Fiziologiia rasteniy. 1990; 37(1):188-92
[6] Kohlenbach HW, Wenzel G, Hoffmann F. Regeneration of Brassica napus plantlets in cultures from isolated protoplasts of haploid stem embryos as compared with leaf protoplasts. Z Pflanzenphysiol. 1982;105(2):131–42.
[7] Sidorov VA, Menczel L, Nagy F, Maliga P. Chloroplast transfer in Nicotiana based on metabolic complementation between irradiated and iodoacetate treated protoplasts. Planta. 1981;152(4):341-5.
[8] Menczel L, Galiba G, Nagy F, Maliga P. Effect of radiation dosage on efficiency of chloroplast transfer by protoplast fusion in Nicotiana. Genetics. 1982;100(3):487-95.
[9] Toriyama K, Hinata K, Kameya T. Production of somatic hybrid plants, “Brassicomoricandia”, through protoplast fusion between Moricandia arvensis and Brassica oleracea. Plant Sci. 1987;48(2):123–8.
[10] Murashige T, Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant. 1962;15(3):473–97.
[11] Maurer HR. Disk electrophoresis and related techniques of polyacrylamide gel electrophoresis. Berlin : Walter de Gruyter, 1976. 187 p.
[12] Brewer G. Y. An introduction to isozyme techniques. New York : Acad, press, 1970. 230 p.
[13] Bookjans G, Stummann BM, Henningsen KW. Preparation of chloroplast DNA from pea plastids isolated in a medium of high ionic strength. Anal Biochem. 1984;141(1):244-7.
[14] Terada R, Yamashita Y, Nishibayashi S, Shimamoto K. Somatic hybrids between Brassica oleracea and B. campestris: selection by the use of iodoacetamide inactivation and regeneration ability. Theor Appl Genet. 1987;73(3):379-84.
[15] Yamashita Y, Terada R, Nishibayashi S, Shimamoto K. Asymmetric somatic hybrids of Brassica: partial transfer of B. campestris genome into B. oleracea by cell fusion. Theor Appl Genet. 1989;77(2):189-94.
[16] Larkin PJ, Scowcroft WR. Somaclonal variation - a novel source of variability from cell cultures for plant improvement. Theor Appl Genet. 1981;60(4):197-214.