Biopolym. Cell. 1991; 7(4):61-65.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.0002E2
Клітинна біологія
Індукований морфогенез горіху волоського in vitro
1Півень М. М., 1Мельничук Г. Г., 1Фелалієв А. С.
  1. Інститут клітинної біології та генетичної інженерії АН УСРС
    Київ, СРСР

Abstract

Досліджували здатність до морфогенезу in vitro апікальних і латеральних бруньок із дерев 15–30- та 1–3-літнього віку горіха волоськог о. Формування адвентивних пагонів індукували на середовищі MC з IMK (0,01 мг/л) та 6-БАП (1 мг/л) через 12 тижнів культивування, включаючи два субкультивування через 2 і 6 тижнів. Пагони, отримані в культурі in vitro, видержували в рідкому середовищі MC з IMK (1; 5; 10 мг/л) та сахарозою (60 г/л) на протязі 6 діб в темряві. Вкоріняли пагони горіха волоського на безгормональному середовищі, макроелементи якого розбавляли в 4 рази, з агаром.
Повний текст: (PDF, російською)

References

[1] Rybin VA methods of vegetative propagation of walnut. Kishinev: Shtiintsa, 1961. 29 p.
[2] Tsurkan IP. Growing grafted walnut planting material in Moldova. Achievements in the fruit and nursery management NRB MSSR. Chisinau Maps Moldovenyaska. 1978:208-213.
[3] Strela TE. New biotechnology walnut grafting. Kiev: Naukova Dumka, 1987. 59.
[4] Chalupa V. Vegetativni mnozeni brizy (Betula pendula Roth.), dubu (Quercus robur L.) a jasanu (Fraxinus escelsior L.) in vitro. Pr. vulhm. 1983;62:179-94.
[5] Pua Eng-Chong, Chong Calvin. Regulation of in vitro shoot and root regeneration in Macspur apple by sorbitol (Z)-glucitol) and related carbon sources. J Amer Soc Hort Sci. 1985; 110(5):705-9.
[6] Driver JA, Kuniyuki AH. In vitro propagation of Paradox wal nut rootstock. Hort Sci. 1984; 19(4):507-9.
[7] Meynier V. Mise en culture in vitro de meristeme de Noyers hybrioes. C r Acad Sci C. 1985; 301(5):261-4.
[8] Wood BW. In vitro proliferation of pecan. Hort Sci. 1982; 17(6):890-1.
[9] Liu S, Han B. In vitro propagation of walnut (Juglans regia L.). Acta Agr Univ. Pekinesis. 1986; 12(2):143-8.
[10] Tulecke W, McGranahan G. Somatic embryogenesis and plant regeneration from cotyledons of walnut, Juglans regia L. Plant Sci. 1985;40(1):57–63.
[11] Felaliev A. Morphogenesis Juglans regia in vitro. Ukr Bot Zh. 1990;47(3):85-7.
[12] Boltivets VS, Piven NM. Induced embryoidogenesis in the culture tissue of Juglans regia L. Fiziologiia i biokhimiia kul't rasteniy. 1990; 22(4):409-13
[13] Murashige T, Skoog F. A Revised Medium for Rapid Growth and Bio Assays with Tobacco Tissue Cultures. Physiol Plant. 1962;15(3):473–97.
[14] Jay-allemand C, Cornu D, Macheix JJ, Chanteloup G. Caractérisation du rajeunissement du Noyer (Juglans sp.) par une étude spectrophotométrique globale du contenu polyphénolique. Ann For Sci. 1987;44(3):303–14.
[15] Felaliev A. Physiological basis of micropropagation of walnut in vitro: Author. dis. ... Kand. biol. nauk. Dushanbe, 1990. 20 p.