Biopolym. Cell. 1990; 6(3):77-80.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.000271
Генно-інженерна біотехнологія
Генетична трансформація гороху, опосередкована Agrobacterium tumefaciens
1Зубко Є. І., 1Кучук М. В., 2Туманова Л. Г., 2Віконська І. А., 1Глеба Ю. Ю.
  1. Інститут ботаніки ім. М. Г. Холодного АН УРСР
    Київ, СРСР
  2. Інститут екології генетики АН Молдавської РСР
    Кишинів, СРСР

Abstract

Показано можливість генетичної трансформації гороху за допомогою А. tumefaciens. Трансформацію здійснювали кокультивуванням рослинних тканин з «shooty»-мутантом A. tumefaciens pGV2206; селекцію – на безгормональному середовищі Гамборга. Відібрано 12 регенеруючих ліній, що зберігають здатність кущитися на живильному середовищі, яке не містить фітогормонів, уже більше 1,5 року. З цих ліній отримано нормалізовані пагони. За допомогою методу блотинг-гібридизації за Саузерном показано присутність у ДНК трансгенних рослин гена NPTII плазміди pGV2206 A. tumefaciens.
Повний текст: (PDF, російською)

References

[1] St Schell J. Transgenic plants as tools to study the molecular organization of plant genes. Science. 1987;237(4819):1176-83.
[2] Piruzyan ES. Basics of plant genetic engineering. Moscow, Nauka, 1988; 340 p.
[3] Willmitzer L. The use of transgenic plants to study plant gene expression. Trends Genet. 1988;4(1):13-8. Review.
[4] Botterman J, Leemans J. Engineering herbicide resistance in plants. Trends Genet. 1988;4(8):219-22. Review.
[5] Leemans J, Shaw C, Deblaere R, De Greve H, Hernalsteens JP, Maes M, Van Montagu M, Schell J. Site-specific mutagenesis of Agrobacterium Ti plasmids and transfer of genes to plant cells. J Mol Appl Genet. 1981;1(2):149-64.
[6] Greve HD, Leemans J, Hernalsteens J-P, Thia-Toong L, Beuckeleer MD, Willmitzer L, et al. Regeneration of normal and fertile plants that express octopine synthase, from tobacco crown galls after deletion of tumour-controlling functions. Nature. 1982;300(5894):752–5.
[7] Leemans J, Deblaere R, Willmitzer L, De Greve H, Hernalsteens JP, Van Montagu M, Schell J. Genetic Identification of functions of TL-DNA transcripts in octopine crown galls. EMBO J. 1982;1(1):147-52.
[8] Gamborg OL, Miller RA, Ojima K. Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Exp Cell Res. 1968;50(1):151-8.
[9] Deak M, Kiss GB, Koncz C, Dudits D. Transformation of Medicago by Agrobacterium mediated gene transfer. Plant Cell Rep. 1986;5(2):97-100.
[10] Maniatis T., Fritsch E. F., Sambrook J. Molecular cloning: a laboratory manual. New York: Cold Spring Harbor Lab. press, 1982 545 p.
[11] Uchimiya H, Fushimi T, Hashimoto H, Harada H, Syono K, Sugawara Y. Expression of a foreign gene in callus derived from DNA-treated protoplasts of rice (Oryza sativa L.). Mol Gen Genet. 1986;204(2):204–7.
[12] Lichtenstein C. P., Draper J. Genetic engineering of plants. DNA cloning: a practical appoach. Ed . D. M. Glover. Washington: IRL press, 1985. V. 2:78.
[13] Methodical recommendations on micro cloning pea plants in tissue culture in vitro. M., 1988. 42p.
[14] Barry GF, Rogers SG, Fraley RT, Brand L. Identification of a cloned cytokinin biosynthetic gene. Proc Natl Acad Sci U S A. 1984;81(15):4776-80.