Biopolym. Cell. 1989; 5(4):71-75.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.0000D7
Клітинна біологія
Зв’язування алкілуючих похідних олігонуклеотидів клітинами за присутності домішок, що стимулюють процес трансфекції
1Буторін А. С., 1Власов В. В., 1Іванова Є. М., 1Райт А. С., 1Юрченко Л. В., 1Шишкіна І. Г., 1Якубов Л. А.
  1. Інститут біоорганічної хімії Сибірського відділення АН СРСР
    Новосибірськ, СРСР

Abstract

Вивчено вплив ряду добавок, які застосовано для поліпшення трансфекції еукаріотичних клітин нуклеїновими кислотами, на зв’язування клітинами фібробластів миші L-929 і асцитної карциноми Кребс-2 [ 4-N-2-хлоретил)-N-метиламінобензил ]-5 '-[ 32P ]фосфаміду олігонуклеотидів різного складу і довжини. Показано, що диметилсульфоксид, ДЕАЕ-декстран і полілізин неефективні або малоефективні для збільшення ступеня зв’язування. Помітний ефект чинило соосаждення олігонуклеотидних похідних на клітинах хлористим кальцієм з фосфатного буфера : зв’язування похідних клітинами зростало як мінімум на порядок, а рівень специфічної модифікації нуклеїнових кислот всередині клітини – у шість разів.
Повний текст: (PDF, російською)

References

[1] Knorre DG, Vlassov VV. Complementary-addressed (sequence-specific) modification of nucleic acids. Prog Nucleic Acid Res Mol Biol. 1985;32:291-320.
[2] Zamecnik PC, Stephenson ML. Inhibition of Rous sarcoma virus replication and cell transformation by a specific oligodeoxynucleotide. Proc Natl Acad Sci U S A. 1978;75(1):280-4.
[3] Stephenson ML, Zamecnik PC. Inhibition of Rous sarcoma viral RNA translation by a specific oligodeoxyribonucleotide. Proc Natl Acad Sci U S A. 1978;75(1):285-8.
[4] Vlasov VV, Godovikov AA, Zarytova VF, Ivanova EM, Knorre DG. Suppression of immunoglobulin synthesis in myeloma MORS 21 cells by an alkylating oligonucleotide derivative complementary to the mRNA coding for light-chain immunoglobulin. Dokl Akad Nauk SSSR. 1984;276(5):1263-5.
[5] Cazenave C, Loreau N, Toulme JJ, Helene C. Anti-messenger oligodeoxynucleotides: specific inhibition of rabbit beta-globin synthesis in wheat germ extracts and Xenopus oocytes. Biochimie. 1986;68(9):1063-9.
[6] Ivanova EM, Karpova GG, Knorre DG, Popova VS, Rait AS. Selective modification of polyadenyl fragments of mRNA from Krebs-2 ascites carcinoma cells by an alkylating derivative of nonathymidilyluridine. Mol Biol (Mosk). 1984;18(3):613-9.
[7] Juliano R, Mayhew E. Interaction of polynucleotides with cultured mammalian cells. 1. Uptake of RNA by Ehrlich ascites carcinoma cells. Exp Cell Res. 1972;73(1):3-12.
[8] Warden D, Thorne HV. The infectivity of polyoma virus DNA for mouse embryo cells in the presence of diethylaminoethyl-dextran. J Gen Virol. 1968;3(3):371-7.
[9] Graham FL, van der Eb AJ. A new technique for the assay of infectivity of human adenovirus 5 DNA. Virology. 1973;52(2):456-67.
[10] Stenberg K, Oberg B, Chattopadhyaya JB. Precipitation of nucleotides by calcium phosphate. Biochim Biophys Acta. 1982;697(2):170-3.
[11] Zarytova VF, Ivanova EM, Romanenko VP. Synthesis of oligonucleotides by PhosPhotriester aPProach in chloroform. Russian Journal of Bioorganic Chemistry. 1983; 9(4):516-21.
[12] Bausk EV, Gorn VV, Lebedev AV. General scheme of the solid-Phase PhosPhotriester synthesis of 5'-PhosPhorylated-oligodeoxyribonucleotides on the basis of β-cyanoethyl P-chloroPhenyl esters of N-acylnucleoside-5'-PhosPhates. Russian Journal of Bioorganic Chemistry. 1985; 11(6):815-20.
[13] Maniatis T, Fritsch EF, Sambrook J. Molecular cloning - a laboratory manual. New York, Cold SPring Harbor, 1982; 545 P.
[14] Godovikova TS, Zarytova VF, Khalimskaya LM. Reactive PhosPhamidates of mono- and dinucleotides. Russian Journal of Bioorganic Chemistry. 1986; 12(4):475-81.
[15] Vlassov VV, Gorokhova OE, Ivanova EM, Kutyavin IV, Yurchenko LV, Yakubov LA, Abdukayumov MN, Skoblov YuS. Interaction of alkylating oligonucleotide derivatives with mouse fibroblasts. Biopolym Cell. 1986; 2(6):323-7.