Biopolym. Cell. 1988; 4(2):91-100.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.000217
Клітинна біологія
Нокодазол призводить до інактивації центрів організації мікротрубочок і появи областей локальної полімеризації мікротрубочок у κ-мітозі
1Алієва І. Б., 1Воробйов І. А.
  1. Міжфакультетська науково-дослідна лабораторія ім. А. Н. Білозерського,
    Московський державний університет
    Москва, СРСР

Abstract

За дії нокодазолу (0,02 мкг/мл) зберігається мітотичне веретено; за його концентрації 0,2 мкг/мл з’являються центри сходження мікротрубочок (МТ), не пов’язані ні з центріолями, ні з хромосомами. За концентрації 0,6 мкг/мл веретено повністю руйнується, хромосоми збираються в компактну пористу структуру. Якщо всередину комірки звернені кінетохори декількох хромосом, то в ній безладно розташовуються короткі МТ. У кожній клітині розпадається одна диплосома, в деяких клітинах – обидві. За концентрацій 0,02–0,2 мкг/мл дочірня центріоль подовжується у 1,5–2 рази; за концентрацій 0,2–0,6 мкг/мл кінетохори подовжуються у 1,5–3 рази.
Повний текст: (PDF, російською)

References

[1] Kleinfeld RG, Sisken JE. Morphological and kinetic aspects of mitotic arrest by and recovery from colcemid. J Cell Biol. 1966;31(3):369-79.
[2] Brinkley BR, Stubblefield E, Hsu TC. The effects of colcemid inhibition and reversal on the fine structure of the mitotic apparatus of Chinese hamster cells in vitro. J Ultrastruct Res. 1967;19(1):1-18.
[3] Alieva IB, Vorob'ev IA. Conditions of the reversibility of metaphase arrest and induction of multi-polar mitoses after treatment with nocodazole. Tsitologiia. 1987;29(5):560-8.
[4] Vorobjev IA, Chentsov YuS. Centrioles in the cell cycle. I. Epithelial cells. J Cell Biol. 1982;93(3):938-49.
[5] De Brabander MJ, Van de Veire RM, Aerts FE, Borgers M, Janssen PA. The effects of methyl (5-(2-thienylcarbonyl)-1H-benzimidazol-2-yl) carbamate, (R 17934; NSC 238159), a new synthetic antitumoral drug interfering with microtubules, on mammalian cells cultured in vitro. Cancer Res. 1976;36(3):905-16.
[6] Schiff PB, Horwitz SB. Taxol stabilizes microtubules in mouse fibroblast cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 1980;77(3):1561-5.
[7] Horwitz SB, Parness J, Schiff PB, Manfredi JJ. Taxol: a new probe for studying the structure and function of microtubules. Cold Spring Harb Symp Quant Biol. 1982;46 Pt 1:219-26.
[8] Brenner SL, Brinkley BR. Tubulin assembly sites and the organization of microtubule arrays in mammalian cells. Cold Spring Harb Symp Quant Biol. 1982;46 Pt 1:241-54.
[9] Weisenberg RC, Cianci C. ATP-induced gelation--contraction of microtubules assembled in vitro. J Cell Biol. 1984;99(4 Pt 1):1527-33.
[10] Weisenberg RC, Allen RD, Inoue S. ATP-dependent formation and motility of aster-like structures with isolated calf brain microtubule proteins. Proc Natl Acad Sci U S A. 1986;83(6):1728-32.
[11] Witt PL, Ris H, Borisy GG. Origin of kinetochore microtubules in Chinese hamster ovary cells. Chromosoma. 1980;81(3):483-505.
[12] de Brabander M, Geuens G, Nuydens R et al. The microtubule nucleating and organizing activity of kinetochores and centrosomes in living PtK2-cells. In: Microtubules and microtubule inhibitors. Eds M. de Brabander, J. de Mey. Amsterdam : Elsevier, 1980:255-276.
[13] Bystrevskaia VB, Onishchenko GE, Chentsov IuS. Dynamics of the mitotic cycle and mitosis anomalies in 2-mercaptoethanol action on pig embryo kidney tissue culture cells. Tsitologiia. 1981;23(6):638-46.
[14] Keryer G, Ris H, Borisy GG. Centriole distribution during tripolar mitosis in Chinese hamster ovary cells. J Cell Biol. 1984;98(6):2222-9.
[15] Mazia D, Harris PJ, Bibring T. The Multiplicity of the Mitotic Centers and the Time-Course of Their Duplication and Separation. J Biophys Biochem Cytol. 1960;7(1):1-20.
[16] Sluder G, Rieder CL. Centriole number and the reproductive capacity of spindle poles. J Cell Biol. 1985;100(3):887-96.
[17] Stubblefield E, Brinkley BR. Cilia formation in Chinese hamster fibroblasts in vitro as a response to colcemid treatment. J Cell Biol. 1966;30(3):645-52.
[18] Krishan A. Fine structure of the kinetochores in vinblastine sulfate-treated cells. J Ultrastruct Res. 1968;23(1):134-43.
[19] Alov IA, Lyubskii SL. Functional morphology of the kinetochore. Int Rev Cytol Suppl. 1977;(6):59-74.
[20] Mitchison TJ, Kirschner MW. Properties of the kinetochore in vitro. I. Microtubule nucleation and tubulin binding. J Cell Biol. 1985;101(3):755-65.
[21] Brinkley BR, Stubblefield E. Ultrastructure and interaction of the kinetochore and centriole in mitosis and meiosis. Advances in cell biology. Eds D. M. Prescott et al. New York : Appelton-Century Crofts, 1970. Vol. 1:119-185.
[22] Peterson SP, Berns MW. The centriolar complex. Int Rev Cytol. 1980;64:81-106.
[23] Brinkley BR. Microtubule organizing centers. Annu Rev Cell Biol. 1985;1:145-72.
[24] Kirschner MW. Implications of treadmilling for the stability and polarity of actin and tubulin polymers in vivo. J Cell Biol. 1980;86(1):330-4.
[25] Tucker JB. Spatial organization of microtubule-organizing centers and microtubules. J Cell Biol. 1984;99(1 Pt 2):55s-62s.
[26] Mitchison T, Kirschner M. Microtubule assembly nucleated by isolated centrosomes. Nature. 1984 Nov 15-21;312(5991):232-7.
[27] Vorob'ev IA, Chentsov IuS. Centrioles and microtubules in interphase cells exposed to colcemid. The concentration- and time-dependent effect of the action of the poison. Tsitologiia. 1985;27(10):1101-5.