Biopolym. Cell. 2014; 30(5):394-399.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.0008B7
Молекулярна та клітинна біотехнології
Порівняльне дослідження впливу фетальної сироватки телят і сироватки дорослих щурів на культивування нервових клітин новонароджених щурів
1, 2Сукач О. М., 1Шевченко М. В., 2Ляшенко Т. Д.
  1. Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України
    23, Переяслівська вул., Харків, Україна, 61015
  2. Харківський національний педагогічний університет імені Г. С. Сковороди
    вул. Артема, 29, Харків, Україна, 61002

Abstract

Мета. Вивчення впливу фетальної сироватки телят і сироватки дорослих щурів на поведінку ізольованих нервових клітин новонароджених щурів при культивуванні. Методи. Виділення нервових клітин з головного мозку новонароджених щурів; культивування; визначення динаміки утворення моношару клітин; імуноцитохімічне фарбування клітин на присутсність β-тубуліну III, нестину і віментину. Результати. Встановлено, що додавання сироватки дорослих щурів до середовища культивування створює сприятливіші умови для виживання, прикріплення і розпластування диференційованих клітин, а також проліферації стовбурових/прогеніторних нервових клітин новонароджених щурів у процесі культивування in vitro порівняно з внесенням фетальної сироватки телят. Висновки. Використання сироватки дорослих щурів є прийнятнішим при культивуванні ізольованих нервових клітин новонароджених щурів, ніж фетальної сироватки телят.
Keywords: нервові клітини, новонароджені щури, культивування, фетальна сироватка телят, сироватка крові дорослих щурів.
Повний текст: (PDF, англійською)

References

[1] Masters JRW. Animal Cell Culture. A Practical Approach. 3rd Ed. Oxford University Press, 2000; 315 p.
[2] Pajtler K, Bohrer A, Maurer J, Schorle H, Schramm A, Eggert A, Schulte JH. Production of chick embryo extract for the cultivation of murine neural crest stem cells. J Vis Exp. 2010;(45). pii: 2380.
[3] Rauch C, Feifel E, Amann EM, Sp?tl HP, Schennach H, Pfaller W, Gstraunthaler G. Alternatives to the use of fetal bovine serum: human platelet lysates as a serum substitute in cell culture media. ALTEX. 2011;28(4):305-16.
[4] Gstraunthaler G. Alternatives to the use of fetal bovine serum: serum-free cell culture. ALTEX. 2003;20(4):275-81.
[5] Davis J. M. Basic Cell Culture. A Practical Approach. 2nd Ed. Oxford University Press, 2002; 381 p.
[6] van der Valk J, Mellor D, Brands R, Fischer R, Gruber F, Gstraunthaler G, Hellebrekers L, Hyllner J, Jonker FH, Prieto P, Thalen M, Baumans V. The humane collection of fetal bovine serum and possibilities for serum-free cell and tissue culture. Toxicol In Vitro. 2004;18(1):1-12.
[7] Price PJ, Gregory EA. Relationship between in vitro growth promotion and biophysical and biochemical properties of the serum supplement. In Vitro. 1982;18(6):576-84.
[8] Obukhova LM, Deryugina AV, Nikiforova ON. Species differences in vertebrate blood serum structural macroportrait. Vestnik of Lobachevsky State University of Nizhni Novgorod. 2011; 2(2):287–93.
[9] Petrenko AYu, Sukach AN. Isolation of intact mitochondria and hepatocytes using vibration. Anal Biochem. 1991;194(2):326-9.
[10] Seglen PO. Preparation of isolated rat liver cells. Methods Cell Biol. 1976;13:29-83.
[11] Moscona A. Rotation-mediated histogenetic aggregation of dissociated cells. A quantifiable approach to cell interactions in vitro. Exp Cell Res. 1961;22:455-75.
[12] Sukach AN. Characteristics of human embryonic neuronal cells procured by non-enzyme method. Tsitologiia. 2005;47(3):207-13.
[13] Sukach AN, Liashenko TD, Shevchenko MV. Properties of isolated neural cells from newborn rat tissue in vitro. Biotechnologia Acta. 2013;6(3):63–8.