Оптимізація умов культивування пухлинних клітин у напіврідкому агарі для їхнього подальшого імуногістохімічного аналізу

Хоруженко, А. І.

doi:10.7124/bc.000064

Biopolym. Cell. 2012; 28(4):302-305.

http://dx.doi.org/10.7124/bc.000064

Методи

Оптимізація умов культивування пухлинних клітин у напіврідкому агарі для їхнього подальшого імуногістохімічного аналізу

1Хоруженко А. І.

Державна ключова лабораторія молекулярної і клітинної біології
Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
вул. Академіка Заболотного, 150, Київ, Україна, 03680

Abstract

Мета. Оптимізувати умови культивування злоякісних клітин у напіврідкому агарі для подальшого імуногістохімічного аналізу отриманих тривимірних колоній клітин. Методи. Культивування клітин лінії MCF-7 карциноми молочної залози у напіврідкому агарі, імуногістохімічне та імунофлуоресцентне виявлення епітеліальних антигенів і кінази mTOR у культивованих клітинах. Результати. Описано методичний підхід до культивування клітин у напіврідкому агарі, що дозволяє проводити морфологічний, морфометричний та імунохімічний аналіз досліджуваних клітин. Висновки. Запропонований метод надає додаткову характеристику клітин, які ростуть у напіврідкому агарі, що може бути корисним як для базових досліджень, так і при оцінці ефективності протипухлинних препаратів.

Keywords: напіврідкий агар, оцінка ефективності колонієутворення, тривимірні культури злоякісних клітин

Повний текст: (PDF, російською) (PDF, англійською)

References

[1] Chen X., Overcash R., Green T., Hoffman D., Asch A. S., RuizEchevarria M. J. The tumor suppressor activity of the transmembrane protein with epidermal growth factor and two follistatin motifs 2 (TMEFF2) correlates with its ability to modulate sarcosine levels J. Biol. Chem 2011 6, N 286:16091–16100.

[2] Hagan C. R., Regan T. M., Dressing G. E., Lange C. A. ck2-dependent phosphorylation of progesterone receptors (PR) on Ser81 regulates PR-B isoform-specific target gene expression in breast cancer cells Mol. Cell. Biol 2011 31, N 12 :2439–2452.

[3] Khoruzhenko A. I. 2D- and 3D-cell culture Biopolym. Cell 2011 27, N 1:17–24.

[4] Kwak Y. T., Radaideh S. M., Ding L., Li R., Frenkel E., Story M. D., Girard L., Minna J., Verma U. N. Cells lacking IKKa show nuclear cyclin D1 overexpression and a neoplastic phenotype: role of IKKa as a tumor suppressor Mol. Cancer Res 2011 9, N 3:341–349.

[5] Goparaju C. M., Blasberg J. D., Volinia S., Palatini J., Ivanov S., Donington J. S., Croce C., Carbone M., Yang H., Pass H. I. Onconase mediated NFKb downregulation in malignant pleural mesothelioma Oncogene 2011 30, N 24:2767–2777.

[6] Hamma-Kourbali Y., Bermek O., Bernard-Pierrot I., Karaky R., Martel-Renoir D., Frechault S., Courty J., Delbe J. The synthetic peptide P111-136 derived from the C-terminal domain of heparin affin regulatory peptide inhibits tumour growth of prostate cancer PC-3 cells BMC Cancer 2011 11:212.

[7] Maurya D. K., Ayuzawa R., Doi C., Troyer D., Tamura M. Topoisomerase I inhibitor SN-38 effectively attenuates growth of human non-small cell lung cancer cell lines in vitro and in vivo J. Environ. Pathol. Toxicol. Oncol 2011 30, N 1:1–10.

[8] Feldmann G., Mishra A., Bisht S., Karikari C., Garrido-Laguna I., Rasheed Z., Ottenhof N. A., Dadon T., Alvarez H., Fendrich V., Rajeshkumar N. V., Matsui W., Brossart P., Hidalgo M., Bannerji R., Maitra A., Nelkin B. D. Cyclin-dependent kinase inhibitor Dinaciclib (SCH727965) inhibits pancreatic cancer growth and progression in murine xenograft models Cancer Biol. Ther 2011 12, N 7:598–609.