Biopolym. Cell. 2011; 27(5):339-342.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.00011E
Пластичність мозку щурів після дії внутрішньоутробного іммобілізаційного стресу
1Абрамян С. С., 2Меліксетян І. Б., 1Саакян І. К., 1Тумасян Н. В., 3Бадалян Б. Ю., 1Галоян А. А.
  1. Інститут біохімії ім. Г. Х. Бунятяна НАН РА
    вул. П. Севак 5/1, Єреван, Республіка Вірменія, 0014
  2. Інститут фізіології ім. Л. А. Орбелі НАН РА
    вул. Орбелі 22, Єреван, Республіка Вірменія, 0028
  3. Єреванський Державний Медичний Університет імені Мхитара Гераці
    вул. Корюна 2, Єреван, Республіка Вірменія, 0025

Abstract

Мета даного гістохімічного та імуногістохімічного дослідження – вивчення клітинних структур мозку новонароджених щурів після дії внутрішньоутробного іммобілізаційного стресу (ІМО). Методи. Гістохімічний метод виявлення активності Са2+-залежної кислої фосфатази та АВС-імуногістохімічний метод. Результати. У різних відділах мозку у відповідь на ІМО визначено клітинні структури, які містять маркери радіальних астроцитів GFAP, стовбурових клітин мишей, нейроепітеліальних стовбурових клітин нестину і гіпоталамічного нейропротекторного пролін-багатого поліпептиду, PRP-1 (природний цитокін Галармін, попередником якого є нейрофізин-вазопресин-асоційований глікопротеїн). Висновки. Виявлення PRP-1 у вищезазначених клітинних структурах поряд з нейронами і нервовими волокнами вказує на процес утворення нових нейронів у відповідь на ІМО та включення PRP-1 у механізм даного відновлювального процесу.
Keywords: пластичність мозку щурів, внутрішньоутробний іммобілізаційний стрес, імунореактивність стовбурових клітин, PRP-1, GFAP, нестин
Повний текст: (PDF, англійською)

References

[1] Markossian K. A., Gurvitz B. Ya., Galoyan A. A. Isolation and chemical identification of new peptides from neurisecretory granules of hypothalamus Neurokhimiya 1999 16, N 1 P. 22–25.
[2] Simonian G. M., Nersissian A. K., Simonian R. M., Babayan M. A., Simonian N. A., Galoyan A. A. Antitumor and antistressor effect of hypothalamic PRP-1 in sarcoma-45 in vivo: the possible biochemical mechanisms Neurokhimiya 2005 22, N 2 P. 125–130.
[3] Galoian K, Scully S, Galoyan A. Myc-oncogene inactivating effect by proline rich polypeptide (PRP-1) in chondrosarcoma JJ012 cells Neurochem. Res 2009 34, N 2 P. 379–385.
[4] Aprikian V. S., Galoyan A. A. Hypothalamic polypeptide preserves from death mices infected with gram-negative bacteria Neurokhimiya 2000 17, N 1 P. 60–63.
[5] Galoyan A. A., Aprikyan V. S. A new hypothalamic polypeptide is a regulator of myelopoiesis Neurochem. Res 2002 27, N 4 P. 305–312.
[6] Pat. No. 1696 A2, Pat. No. P20050113 Republic of Armenia. A method for treatment and/or prevention of leucosis at the cattle / A. A. Galoyan, A. A. Shirvanyan Issued on 15.03.2006.
[7] Abrahamyan S. S., Sarkissian J. S., Meliksetyan I. B., Galoyan A. A. Survival of trauma-injured neurons in rat brain by treatment with proline-rich peptide (PRP-1): an immunohistochemical study Neurochem Res 2004 29, N 4 P. 695–708.
[8] Sarkissian J. S., Galoyan A. A., Chavushyan V. A., Meliksetyan I. B., Abrahamyan S. S., Avakyan Z. E., Aloyan M. L., Voskanyan A. V., Mkrtchyan O. A. Morpfofunctional research of protective actions of snake poison Naja Naja Oxiana at the lateral hemisection of spinal cord Neurokhimiya 2008 23, N 4 P. 362–376.
[9] Holtzer H. Cell lineages, stem cells and the «quantal» cell cycle concept Stem cells and tissue homeostasis / Eds B. I. Lord, C. S. Potten, R. J. Cole New York: Cambridge Univ. Press, 1978 P. 1–28.
[10] Leblond C. P. Classification of cell populations on the basis of their proliferative behavior Natl. Cancer Inst. Monogr 1964 14 P. 119–150.
[11] Hsu S. M., Raine L., Fanger H. Use of avidin-biotin-peroxidase complex (ABC) in immunoperoxidase techniques: a comparison between ABC and unlabeled antibody (PAP) procedures J. Histochem. Cytochem 1981 29, N 4 P. 577–580.
[12] Meliksetyan I. B. Detection of Ca2+-dependent acid phosphatase activity in rat brain cellular structures Morphologia (St. Petersburg) 2007 131, N 2:77–80.
[13] Ambrosius X. Obtaining of antisera from different animals Immu nological methods / Ed. G. Frimel Moscow: Medicina, 1987 P. 14–15.
[14] Pelletier L., Angonin R., Regnard J., Fellmann D., Charbord P. Human bone marrow angiogenesis: in vitro modulation by substance P and neurokinin A Br. J. Haematol 2002 119, N 4 P. 1083–1089.
[15] Hess D. C., Abe T., Hill W. D., Studdard A. M., Carothers J., Masuya M., Fleming P. A., Drake C. J., Ogawa M. Hematopoietic origin of microglial and perivascular cells in brain Exp. Neurol 2004 186, N 2 P. 134–144.
[16] Ponti G., Peretto P., Bonfanti L. Genesis of neuronal and glial progenitors in the cerebellar cortex of peripuberal and adult rabbits PLoS One 2008 3, N 6 P. e2366.
[17] Gage F. H., Coates P. W., Palmer T. D., Kuhn H. G., Fisher L. J., Suhonen J. O., Peterson D. A., Suhr S. T., Ray J. Survival and differentiation of adult neuronal progenitor cells transplanted to the adult brain Proc. Natl Acad. Sci. USA 1995 92, N 25 P. 11879– 11883.
[18] Canoll P. D., Musacchio J. M., Hardy R., Reynolds R., Marchionni M. A., Salzer J. L. GGF/neuregulin is a neuronal signal that promotes the proliferation and survival and inhibits the differentiation of oligodendrocyte progenitors Neuron 1996 17, N 2 P. 229–243.
[19] McKeon R. J., Hoke A., Silver J. Injury-induced proteoglycans inhibit the potential for laminin-mediated axon growth on astrocytic scars Exp. Neurol 1995 136, N 1 P. 32–43.
[20] Powell E. M., Meiners S., DiProspero N. A., Geller H. M. Mechanisms of astrocyte-directed neurite guidance Cell Tissue Res 1997 290, N 2 P. 385–393.
[21] Zuo J., Neubauer D., Dyess K., Ferguson T. A., Muir D. Degradation of chondroitin sulfate proteoglycan enhances the neuritepromoting potential of spinal cord tissue Exp. Neurol 1998 154, N 2 P. 654–662.
[22] Keirstead H. S., Dyer J. K., Sholomenko G. N., McGraw J., Delaney K. R., Steeves J. D. Axonal regeneration and physiological activity following transection and immunological disruption of myelin within the hatchling chick spinal cord J. Neurosci 1995 15, N 10 P. 6963–6974.
[23] Kruger S., Sievers J., Hansen C., Sadler M., Berry M. Three morphologically distinct types of interface develop between adult host and fetal brain transplants: implications for scar formation in the adult central nervous system J. Comp. Neurol 1986 249, N 1 P. 103–116.
[24] Abrahamyan S. S., Meliksetyan I. B., Chavushyan V. A., Aloyan M. L., Sarkissian J. S. Protective action of snake venom Naja naja oxiana at spinal cord hemisection Ideggyogy Sz 2007 60, N 3–4 P. 148–153.
[25] Grove J. E., Bruscia E., Krause D. S. Plasticity of bone marrowderived stem cells Stem. Cells 2004 22, N 4 P. 487–500.
[26] Aimone J. B., Jessberger S., Gage F. H. Adult neurogenesis Scholarpedia 2007 2, N 2 P. 2100.
[27] Jiang Y., Jahagirdar B. N., Reinhardt R. L., Schwartz R. E., Keene C. D., Ortiz-Gonzalez X. R., Reyes M., Lenvik T., Lund T., Blackstad M., Du J., Aldrich S., Lisberg A., Low W. C., Largaespada D. A., Verfaillie C. M. Pluripotency of mesenchymal stem cells derived from adult marrow Nature 2002 418, N 6893 P. 41–49.
[28] Lu P., Blesch A., Tuszynski M. H. Induction of bone marrow stromal cells to neurons: differentiation, transdifferentiation, or artifact? J. Neurosci. Res 2004 77, N 2 P. 174–191.
[29] Vogel W., Grunebach F., Messam C. A., Kanz L., Brugger W., Buhring H. J. Heterogeneity among human bone marrow-derived mesenchymal stem cells and neural progenitor cells Haematologica 2003 88, N 2 P. 126–133.
[30] Bezirganyan K. B., Galoyan A. A., Davtyan T. K. Hypothalamic proline-rich polypeptide enhances human CD34+ progenitor cell differentiation into erythroid and granulomonocytic linea ges Neurochem. J 2008 2, N 4 P. 305,
[31] Galoyan A. A., Korochkin L. I., Rybalkina E. J., Pavlova G. V., Saburina I. N., Zaraiski E. I., Galoyan N. A., Davtyan T. K., Bezirganyan K. B., Revishchin A. V. Hypothalamic proline-rich polypeptide enhances bone marrow colony-forming cell proliferation and stromal progenitor cell differentiation Cell Transplant 2008 17, N 9 P. 1061–1066.