Biopolym. Cell. 2010; 26(1):23-28.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.000140
Структура та функції біополімерів
Вплив ліпополісахариду Pseudomonas syringae pv. atrofaciens 9417 на процеси мутагенезу в про- та еукаріотній системах
1Богдан Ю. М., 1Буценко Л. М., 1Пасічник Л. А., 1Гвоздяк Р. І.
  1. Інститут мікробіології і вірусології ім. Д. К. Заболотного НАН України
    вул. Академіка Заболотного, 154, Київ, Україна, 03680

Abstract

Мета. Вивчити вплив ліпополісахариду (ЛПС) P. syringae pv. atrofaciens на спонтанні та індуковані мутації в про- та еукаріотній тест-ситемах. Методи. Мутагенну та антимутагенну активність ЛПС вивчали в Allium cepa-тесті та тесті Еймса. Результати. ЛПС не впливає на спонтанні мутації у Salmonella typhimurium, але зменшує кількість мутацій, індукованих біхроматом калію та N-метил-N'-нітро-N'-нітрозогуанідином. Під дією ЛПС у концентраціях 10,0 та 5,0 мг/мл знижується мітотичний індекс, а в концентраціях 5,0 та 2,5 мг/мл зростає кількість фрагментів хромосом у клітинах апікальної меристеми корінців A. cepa. Висновки. Встановлено різний вплив ЛПС на процеси мутагенезу у клітинах про- та еукаріотів. ЛПС виявляють мутагенну активність в A. cepa-тесті та антимутагенну – у тесті Еймса.
Keywords: мутації, хромосомні аберації, ЛПС
Повний текст: (PDF, українською) (PDF, англійською)

References

[1] Varbanets LD, Zakharova IYa, Gvozdyak RI, Muras VA. Glycopolymers of Pseudomonas solanacearum and their role in plant infectivity. Mikrobiol Zh. 1989; 51(2):25-32.
[2] Dow M., Newman M. A., von Roepenack E. The induction and modulation of plant defense responses by bacterial lipopolysaccharides Annu. Rev. Phytopathol 2000 38241– 261.
[3] Jakovleva LM. Role of bacterial glycopolymers in pathogenesis of plant bacterioses. Mikrobiol Zh. 1992 54(3):87–102.
[4] Lugtenberg B. J. J., Chin-A-Woegn T. F. C., Bloemberg G. V. Microbe-plant interactions: principles and mechanisms Antonie van Leeuwenhoek 2002 81 P. 373–383.
[5] Vashchenko L. N., Pasichnik L. A., Bogdan Ju. N., Gvozdjak R. I. Antimutagenic activity of the lipopolysaccharide of Pseudomonas syringae pv. syringae UKM V-1027 Materials of the Int. sci. conf. (1–2 june, 2006, Minsk-Rakov) Minsk, 2006 P. 68–71.
[6] Vashchenko L. M., Pasichnyk L. A., Gvozdyak R. I. Influence of Pseudomonas syringae pv. atrofaciens lipopolysaccharide on spontaneous and induced by bichromate potassium mutagenesis in Salmonella typhimurium. Biopolym. cell 2004; 20, N 4 P. 295–299.
[7] Bogdan Ju. M., Butsenko L. M., Pasichnik L. A., Gvozdjak R. I. Antimutagenic activity of the lipopolysaccharide of Pseudomonas syringae pv. atrofaciens 9400. Nauk. Visn. Uzhhorod. Univ. (Ser. Biol.) 2008; 24 P. 110–113.
[8] Gvozdyak RI, Vashenko LM, Pasichnik LA. Gene protective activity of Pseudomonas syringae pv. coronafaciens 9030 lipopolysaccharide. Dopovidi Nats Akad Nauk Ukrainy. 2003;(4):159–62.
[9] Zacharova I. Ja., Kosenko L. V. Metody izuchenija mikrobnyh polisaharidov K.: Nauk. dumka, 1982 192 p.
[10] Fonshtejn L. M., Kalinina L. M., Poluhina G. N., Abilev S. K., Shapiro A. A. Test-sistema otsenki mutagennoy aktivnosti zagryazniteley sredy na Salmonella (Metodicheskie ukazanija) M., 1977 P. 1–52.
[11] Vashchenko L. M. Mechanism of antimutagenic activity of Pseudomonas syringae lipopolysaccharides. Mikrobiol Z. 2005; 65, N 2 P. 30–38.
[12] Butsenko L. M. Gene modulation activity of culture liquid and lipopolysaccharide Pseudomonas syringae pv. syringae UKM V-1027. Nauk. Visn. Uzhhorod. Univ. (Ser. Biol.) 2008; 22 P. 80–83.
[13] Rank J. The method of Allium anaphase-telophase chromosome aberration assay. Ekologiya (Vilnius) 2003; N 1 P. 38–42.
[14] Borovikov V. P. Populyarnoe vvedenie v programmu Statistika M.: Komp'yuterPress, 1998 267 p.
[15] Bogdan Ju. M., Butsenko L. M., Pasichnik L. A., Gvozdyak R. I. The study of mutagenicity of Pseudomonas syringae pv. atrofaciens 9400 lipopolysaccharide in Allium cepa-testi. Nauk. Zapysky NaUKMA 2008; 80:22–26.
[16] Gahrton G., Robert K. H., Friberg K., Zech L., Bird A. G. Nonrandom chromosomal aberrations in chronic lymphocytic leukemia revealed by polyclonal B-cell-mitogen stimulation. Blood. 1980; 56, N 4: 640–647.
[17] Sewerynek E, Ortiz GG, Reiter RJ, Pablos MI, Melchiorri D, Daniels WM. Lipopolysaccharide-induced DNA damage is greatly reduced in rats treated with the pineal hormone melatonin. Mol Cell Endocrinol. 1996;117(2):183-8.
[18] Suliman H. B., Carraway M. S., Piantadosi C. A. Postlipopolysaccharide oxidative damage of mitochondrial dNA Amer. J. Respirat. and Crit. Care Med 2003 167: 570– 579.