Biopolym. Cell. 2000; 16(5):420-424.
Молекулярна та клітинна біотехнології
Плазміди біодеградації поверхнево-активних речовин
- Інститут біоколоїдної хімії ім. Ф. Д. Овчаренка НАН України
бульв. Академіка Вернадського, 42, Київ, Україна, 03142 - Інститут біохімії і фізіології мікроорганізмів ім. Г. К. Скрябіна
пр-т Науки, 5, Пущино, Московська область, Російська Федерація, 142290
Abstract
Показано, що деградація багатьох аніонних, катіонних та
амфолітних поверхнево-активних речовин (ПАР) у псевдомонад контролюються плазмідами розміром 60–130 тис. п. н.
Більшість плазмід здатні до кон'югативного переносу та
елімінації з бактеріальних клітин. Створені первинні рестрикційні карти плазмід біодеградації ПАР мають значну
різницю.
Повний текст: (PDF, англійською)
References
[1]
Johnston JB, Murray K, Cain RB. Microbial metabolism of aryl sulphonates a re-assessment of colorimetric methods for the determination of sulphite and their use in measuring desulphonation of aryl and alkylbenzene sulphonates. Antonie Van Leeuwenhoek. 1975;41(4):493-511.
[2]
Kertesz MA, Cook AM, Leisinger T. Microbial metabolism of sulfur- and phosphorus-containing xenobiotics. FEMS Microbiol Rev. 1994;15(2-3):195-215. Review.
[3]
Brilon C, Beckmann W, Hellwig M, Knackmuss HJ. Enrichment and isolation of naphthalenesulfonic Acid-utilizing pseudomonads. Appl Environ Microbiol. 1981;42(1):39-43.
[4]
Stavskaya SS, Udod VM, Taranova LA, Krivets LA. Microbiological purification of water from surfactants. Kyiv: Naukova Dumka, 1988. 182 p.
[5]
Taranova LA, Ovcharov LF, Rotmistrov MN. Bacterial degaradation of ampholytic surfactants. Biotekhnologiya. 1990; (4):31-4.
[6]
Stavskaya SS, Taranova LA, Krivets A, Grigorieva TN, Rotmistrov MN. Microbiological method of waste water treatment from anionic surfactants. Khimiya i Tekhnologiya Vody. 1982; 4(4):368-70.
[7]
Taranova LA, Grishchenko SV, Radchenko OS, Trachevsky VV, Delemenchuk NV. Microbiological treatment of waste water from cationic surfactants. Khimiya i Tekhnologiya Vody. 1991; 13(11):1051-6.
[8]
Rheinwald JG, Chakrabarty AM, Gunsalus IC. A transmissible plasmid controlling camphor oxidation in Pseudomonas putida. Proc Natl Acad Sci U S A. 1973;70(3):885-9.
[9]
Griffith KL, Wolf RE Jr. Measuring beta-galactosidase activity in bacteria: cell growth, permeabilization, and enzyme assays in 96-well arrays. Biochem Biophys Res Commun. 2002;290(1):397-402. Erratum in: Biochem Biophys Res Commun 2002 Mar 22;292(1):292.
[10]
Babykin MM, Zinchenko VV, Bibikova MK, Shestakov SV. Isolation of large plasmids. Mol Gen Mikrobiol Virusol. 1984; 7: 21-3.
[11]
Gerhardt P, Murray RGR, Costilow RN, Nester EW, Wood WA, Krieg NR, Phillips GB. Manual of Methods for General Bacteriology. Washington D. C: ASM press, 1981: 137 p.
[12]
Wheatcroft R, Williams PA. Rapid methods for the study of both stable and unstable plasmids in Pseudomonas. J Gen Microbiol. 1981;124(2):433-7.
[13]
Eckhardt T. A rapid method for the identification of plasmid desoxyribonucleic acid in bacteria. Plasmid. 1978;1(4):584-8.
[14]
Maniatis T, Fritch EF, Sambrook . Molecular cloning: A laboratory manual. New York, 1989: 1435.
[15]
Keen NT, Tamaki S, Kobayashi D, Trollinger D. Improved broad-host-range plasmids for DNA cloning in gram-negative bacteria. Gene. 1988;70(1):191-7.
[16]
Figurski DH, Helinski DR. Replication of an origin-containing derivative of plasmid RK2 dependent on a plasmid function provided in trans. Proc Natl Acad Sci U S A. 1979;76(4):1648-52.
[17]
Datta N, Hedges RW, Shaw EJ, Sykes RB, Richmond MH. Properties of an R factor from Pseudomonas aeruginosa. J Bacteriol. 1971;108(3):1244-9.