Biopolym. Cell. 1996; 12(5):66-71.
ПЛР-ампліфікація, клонування та секвенування фрагмента кДНК, що кодує нуклеотидзв'язуючий домен тирозил-тРНК синтетази ссавців
1Леванець О. В., 1Найдьонов В. Г., 1Вудмаска М. І., 1Одинець К. О., 1Мацука Г. Х., 1Корнелюк О. І.
  1. Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
    Вул. Академіка Заболотного, 150, Київ, Україна, 03680

Abstract

Проведено ПЛР-ампліфікацію, клонування та секвенування кДНК-фрагмента, шо кодує N-кінцевий нуклеотидзв'язуючий домен (згортку Россмана) тирозил-тРНК синтетази ссавців. Вперше виявлено унікальний варіант консервативного HIGH-подібного мотиву, HVAY, у якому залишок гліцину, що раніше вважався абсолютно консервативним для всіх АРСаз І структурного класу, замінений на залишок аланіну.

References

[1] Kisselev LL, Favorova OO, Lavrik OI. Biosynthesis of proteins from amino acids to aminoacyl-tRNA. Moscow, Nauka, 1984; 408 p.
[2] Schimmel P. Classes of aminoacyl-tRNA synthetases and the establishment of the genetic code. Trends Biochem Sci. 1991;16(1):1-3. Review.
[3] Moras D. Aminoacyl-tRNA synthetases. Curr Biol. 1992; 2: 138-42.
[4] Rossmann MG, Moras D, Olsen KW. Chemical and biological evolution of nucleotide-binding protein. Nature. 1974;250(463):194-9.
[5] Bhat TN, Blow DM, Brick P, Nyborg J. Tyrosyl-tRNA synthetase forms a mononucleotide-binding fold. J Mol Biol. 1982;158(4):699-709.
[6] Eriani G, Delarue M, Poch O, Gangloff J, Moras D. Partition of tRNA synthetases into two classes based on mutually exclusive sets of sequence motifs. Nature. 1990;347(6289):203-6.
[7] Cusack S, Berthet-Colominas C, H?rtlein M, Nassar N, Leberman R. A second class of synthetase structure revealed by X-ray analysis of Escherichia coli seryl-tRNA synthetase at 2.5 A. Nature. 1990;347(6290):249-55.
[8] Mirande M. Aminoacyl-tRNA synthetase family from prokaryotes and eukaryotes: structural domains and their implications. Prog Nucleic Acid Res Mol Biol. 1991;40:95-142.
[9] Korneliuk AI, Kurochkin IV, Matsuka GKh. Tyrosyl-tRNA synthetase from the bovine liver. Isolation and physico-chemical properties. Mol Biol (Mosk). 1988;22(1):176-86.
[10] Ribkinska TA, Vartanyan OA, Filonenko VV, Sidorik LL, Kornelyuk AI, Beresten SF. A method for selection of hybridomas, secreting monoclonal antibodies against tyrosyl-tRNA synthetase, based on monitoring of the enzymatic activity. Biopolym Cell. 1990; 6(4):97-101
[11] Ribkinska TA, Kornelyuk AI, Beresten SF, Matsuka GKh. The immunochemical approach for studies of structure tyrosyl-tRNA synthetase from bovine liver. Biopolym Cell. 1991; 7(5):33-6.
[12] Gnatenko DV, Korneliuk AI, Matsuka GKh. Tyrosyl-tRNA-synthetase from bovine liver. Functional role of histidine residues. Bioorg Khim. 1991;17(8):1033-7.
[13] Gnatenko DV, Korneliuk AI, Lavrik OI. Chemical modification of lysine residues in tyrosyl-tRNA-synthetase from cattle liver using pyridoxal-5'-phosphate. Biokhimiia. 1991;56(11):1984-90.
[14] Nishimura A, Morita M, Nishimura Y, Sugino Y. A rapid and highly efficient method for preparation of competent Escherichia coli cells. Nucleic Acids Res. 1990;18(20):6169.
[15] Birnboim HC, Doly J. A rapid alkaline extraction procedure for screening recombinant plasmid DNA. Nucleic Acids Res. 1979;7(6):1513-23.
[16] Chow CM, RajBhandary UL. Saccharomyces cerevisiae cytoplasmic tyrosyl-tRNA synthetase gene. Isolation by complementation of a mutant Escherichia coli suppressor tRNA defective in aminoacylation and sequence analysis. J Biol Chem. 1993;268(17):12855-63.
[17] Barker DG, Bruton CJ, Winter G. The tyrosyl-tRNA synthetase from Escherichia coli. Complete nucleotide sequence of the structural gene. FEBS Lett. 1982;150(2):419-23.
[18] Winter G, Koch GL, Hartley BS, Barker DG. The amino acid sequence of the tyrosyl-tRNA synthetase from Bacillus stearothermophilus. Eur J Biochem. 1983;132(2):383-7.
[19] Brick P, Bhat TN, Blow DM. Structure of tyrosyl-tRNA synthetase refined at 2.3 A resolution. Interaction of the enzyme with the tyrosyl adenylate intermediate. J Mol Biol. 1989;208(1):83-98.