Biopolym. Cell. 1985; 1(6):318-322.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.000194
Короткі повідомлення
Взаємодія тРНКPhe–С?С?А(3' NH)-Phe з малою субчастинкою рибосом
1Дорохов Д. Б., 1Шварц В. С., 2Семенков Ю. П.
  1. Відділ генетики рослин АН Молдавської РСР
    Кишинів, СРСР
  2. Ленінградський інститут ядерної фізики ім. Б. П. Константинова АН СРСР
    Гатчина, Ленінградська обл., СРСР

Abstract

Досліджено термодинамічні параметри взаємодії тРНКPhe-С-С-A (3'NH)-Phe ? стабільного аналога аа-тРНК з 30S субчастинкою рибосоми. За присутності матриці 30S субчастинка здатна зв’язувати дві молекули тPHKPhe-C-С-A (3'NH)-Phe ? по акцепторному (А) і донорному (Р) сайтах. Визначено константи асоціації стабільного аналога аа-тРНК з тРНК-зв’язувальними сайтами малої субчастинки рибосоми: KaP = (3,15±0,35)·108 М–1 и KaA = 3·107 М–1. Зроблено висновок, що за термодинамічними параметрами взаємодії з 30S субчастинкою і за дією антибіотиків на цю взаємодію Рhе-тРНКPhe і її аналог тРНКPhe-С-С-A (3'NH)-Phe достатньо близькі. Це дозволить використовувати тРНКPhe-С-С-A (3'NH)-Phe як зручну модель для вивчення взаємодії аа-тРНК з 30S субчастинкою рибосоми.
Повний текст: (PDF, російською)

References

[1] Sprinzl M, Cramer F. The -C-C-A end of tRNA and its role in protein biosynthesis. Prog Nucleic Acid Res Mol Biol. 1979;22:1-69.
[2] Fraser TH, Rich A. Synthesis and aminoacylation of 3'-amino-3'-deoxy transfer RNA and its activity in ribosomal protein synthesis. Proc Natl Acad Sci U S A. 1973;70(9):2671-5.
[3] Kirillov SV, Makhno VI, Semenkov YP. Mechanism of codon-anticodon interaction in ribosomes. Direct functional evidence that isolated 30S subunits contain two codon-specific binding sites for transfer RNA. Nucleic Acids Res. 1980;8(1):183-96.
[4] Katunin VI, Semenkov YP, Makhno VI, Kirillov SV. Comparative study of the interaction of polyuridylic acid with 30S subunits and 70S ribosomes of Escherichia coli. Nucleic Acids Res. 1980;8(2):403-21.
[5] Sprinzl M, Sternbach H. Enzymic modification of the C-C-A terminus of tRNA. Methods Enzymol. 1979;59:182-90.
[6] Peshin NN, Kirillov SV. Nature of the heterogeneity of the 30S ribosomal subunits in vitro. II. Two types of inactivation of the 30S subunits of Escherichia coli ribosomes. Mol Biol (Mosk). 1979;13(4):752-60.
[7] Kirillov SV, Makarov EM, Semenkov YuP. Quantitative study of interaction of deacylated tRNA with Escherichia coli ribosomes. Role of 50 S subunits in formation of the E site. FEBS Lett. 1983;157(1):91-4.
[8] Rheinberger HJ, Sternbach H, Nierhaus KH. Three tRNA binding sites on Escherichia coli ribosomes. Proc Natl Acad Sci U S A. 1981;78(9):5310-4.
[9] Grajevskaja RA, Ivanov YV, Saminsky EM. 70-S ribosomes of Escherichia coli have an additional site for deacylated tRNA binding. Eur J Biochem. 1982;128(1):47-52.
[10] Kirillov SV. Mechanisms codon anticodon interaction in ribosomes. In the book.: Results of science and technology. VINITI (Series Biological Chemistry, vol.18), 1983, p. 5-97.
[11] Kirillov SV, Semenkov IuP. Interaction of tRNA with ribosomes. Mol Biol (Mosk). 1984;18(5):1249-63.
[12] Kirillov SV, Kemkhadze KS, Makarov EM, Makhno VI, Odintsov VB, Semenkov YP. Mechanism of codon-anticodon interaction in ribosomes: codon-anticodon interaction of aminoacyl-tRNA at the ribosomal donor site. FEBS Lett. 1980;120(2):221-4.
[13] Odom OW, Stoffler G, Hardesty B. Movement of the 3'-end of 16 S RNA towards S21 during activation of 30 S ribosomal subunits. FEBS Lett. 1984;173(1):155-8.
[14] Chiaruttini C, Milet M, Hayes D. Structural differences between active and inactive 30 S ribosomal subunits revealed by RNA-protein crosslinking. FEBS Lett. 1984;173(1):90-4.
[15] Ohsawa H, Gualerzi C. Chemical modification in situ of Escherichia coli 30 S ribosomal proteins by the site-specific reagent pyridoxal phosphate. Inactivation of the aminoacyl-tRNA and mRNA binding sites. J Biol Chem. 1983;258(1):150-6.
[16] Uhlenbeck OC, Lowary PT, Wittenberg WL. Role of the constant uridine in binding of yeast tRNAPhe anticodon arm to 30S ribosomes. Nucleic Acids Res. 1982;10(11):3341-52.
[17] Pongs O, Wrede P, Erdmann VA, Sprinzl M. Binding of complementary oligonucleotides to aminoacylated tRNAPhe from yeast. Biochem Biophys Res Communs, 1976; 71(4):1025-33.
[18] Crothers D. M., Cole P. E. Conformational changes of tRNA. In: Transfer RNA. Ed. S. Altman. London : MIT press, 1978, p. 197-247.
[19] Gassen HG. Ligand-induced conformational changes in ribonucleic acids. Prog Nucleic Acid Res Mol Biol. 1980;24:57-86.
[20] Nagamatsu K, Miyazawa Y. Magnesium cation induced conformational change of yeast tRNAPhe as studied by singlet-singlet energy transfer. J Biochem. 1983;94(6):1967-71.