Biopolym. Cell. 1989; 5(2):99-102.
Короткі повідомлення
Вивчення регуляції експресії гена rplL Escherichia coli методом злиття з геном lасZ у плазміді рNМ481
1Патон Є. Б., 1Крупська І. В., 1Живолуп О. М.
  1. Інститут молекулярної біології і генетики АН УСРС
    Київ, СРСР

Abstract

Для вивчення регуляції експресії гена rplL E. coli in vivo сконструйовано серію рекомбінантних плазмід на основі рNМ481. Порівняння рівнів експресії генів rplG'-lacZ' і rplL'-lacZ' показало більш інтенсивну ініціацію трансляції для другого, що, мабуть, забезпечує чотириразовий надлишок білка L7/L12 порівняно з L10 і рештою рибосомних білків Е. соli.

References

[1] Lindahl L, Zengel JM. Ribosomal genes in Escherichia coli. Annu Rev Genet. 1986;20:297-326.
[2] Downing WL, Dennis PP. Transcription products from the rplKAJL-rpoBC gene cluster. J Mol Biol. 1987;194(4):609-20.
[3] An G, Friesen JD. Characterization of promoter-cloning plasmids: analysis of operon structure in the rif region of Escherichia coli and isolation of an enhanced internal promoter mutant. J Bacteriol. 1980;144(3):904-16.
[4] Post LE, Strycharz GD, Nomura M, Lewis H, Dennis PP. Nucleotide sequence of the ribosomal protein gene cluster adjacent to the gene for RNA polymerase subunit beta in Escherichia coli. Proc Natl Acad Sci U S A. 1979;76(4):1697-701.
[5] Minton NP. Improved plasmid vectors for the isolation of translational lac gene fusions. Gene. 1984;31(1-3):269-73.
[6] Vieira J, Messing J. The pUC plasmids, an M13mp7-derived system for insertion mutagenesis and sequencing with synthetic universal primers. Gene. 1982;19(3):259-68.
[7] Maniatis T, Fritsch EF, Sambrook J. Molecular cloning - a laboratory manual. New York, Cold Spring Harbor, 1982; 545 p.
[8] Miller JH. Experiments in molecular genetics. New York, Cold Spring Harbor lab. Publ., 1972; 466 p.
[9] Collins J. Deletions, insertions and rearrangements affecting rpoB gene expression. Mol Gen Genet. 1979;173(2):217-20.
[10] Paton EB, Zhyvoloup AN, Varanitsa LA. The presence of two strong promoters determines the orientation of a DNA fragment inserted into pUC19 plasmid. Biopolym Cell. 1986; 2(4):217-9.
[11] Paton EB, Kroupskaya IV, Zhyvoloup AN. Orientational effects caused in the pUC plasmid by E. coli rplJL-rpoBC-operon fragments. Biopolym Cell. 1988; 4(3):163-7.
[12] Balbas P, Soberon X, Merino E, Zurita M, Lomeli H, Valle F, Flores N, Bolivar F. Plasmid vector pBR322 and its special-purpose derivatives--a review. Gene. 1986;50(1-3):3-40.