Biopolym. Cell. 2012; 28(1):50-55.
Структура та функції біополімерів
Cинергічний вплив асоційованих з мікробами молекул на фенотипове та функціональне дозрівання дендритних клітин, отриманих з моноцитів периферичної крові людини in vitro
- Навчально-науковий центр «Інститут біології»
Київського національного університету імені Тараса Шевченка
вул. Володимирська, 64/13, Київ, Україна, 01601 - Національний інститут раку
вул. Ломоносова, 33/43, Київ, Україна, 03022 - Інститут експериментальної патології, онкології і радіобіології ім. Р. Є. Кавецького
вул. Васильківська, 45, Київ, Україна, 03022
Abstract
Відомо, що асоційовані з мікробами молекули (АММ) чинять стимулювальний вплив на дозрівання дендритних клітин (ДК). Мета. Провести порівняльне дослідження дії різних АММ, використаних як самостійно, так і в комбінації, на дозрівання ДК, отриманих з моноцитів периферичної крові людини in vitro. Методи. Як АММ застосовано ліпополісахарид Escherichia coli та біополімери Staphylococcus aureus Wood 46. Фенотипову зрілість ДК охарактеризовано методом проточної цитофлуориметрії. Функціональну зрілість ДК аналізували в реакції змішаної культури лейкоцитів. Результати. Встановлено, що комбіноване використання АММ є більш результативним для стимуляції фенотипового і функціонального дозрівання ДК in vitro порівняно із самостійним застосуванням мікробних біополімерів. Найвиразніший стимулювальний ефект спостерігався за використання комбінації пептидоглікану з ліпополісахаридом та пептидоглікану з тейхоєвою кислотою. Висновки. Показано існування синергічного впливу АММ щодо стимуляції дозрівання ДК, особливо суттєвого у разі комбінованого застосування асоційованих з мікробами молекул, які взаємодіють з ДК, активуючи різні сигнальні шляхи (пептидоглікан у поєднанні з ліпополісахаридом або пептидоглікан у поєднанні з тейхоєвою кислотою).
Keywords: дендритні клітини, ліпополісахарид, тейхоєва кислота, пептидоглікан
Повний текст: (PDF, англійською)
References
[1]
Liu K., Nussenzweig M. C. Origin and development of dendritic cells. Immunol. Rev 2010 234, N 1:45–54.
[2]
Palucka A. K., Ueno H., Fay J., Banchereau J. Dendritic cells: a critical player in cancer therapy?. J. Immunother 2008 31, N 9:793–805.
[3]
Janikashvili N., Larmonier N., Katsanis E. Personalized dendritic cell-based tumor immunotherapy. Immunotherapy 2010 2, N 1:57–68.
[4]
Castiello L., Sabatino M., Jin P., Clayberger C., Marincola F. M., Krensky A. M., Stroncek D. F. Monocyte-derived DC maturation strategies and related pathways: a transcriptional view. Cancer Immunol. Immunother 2011 60, N 4:457–466.
[5]
Jeras M., Bergant M., Repnik U. In vitro preparation and functional assessment of human monocyte-derived dendritic cells-potential antigen-specific modulators of in vivo immune responses. Transpl. Immunol 2005 14, N 3–4:231–244.
[6]
Gilboa E. DC-based cancer vaccines. J. Clin. Invest 2007 117, N 5:1195–1203.
[7]
Jensen S. S., Gad M. Differential induction of inflammatory cytokines by dendritic cells treated with novel TLR-agonist and cytokine based cocktails: targeting dendritic cells in autoimmunity. J. Inflamm. (Lond) 2010 7:37–48.
[8]
Seya T., Akazawa T., Tsujita T., Matsumoto M. Role of Toll-like receptors in adjuvant-augmented immune therapies. eCAM 2006 3, N 1:133–137.
[9]
Hemmi H., Akira S. TLR signalling and the function of dendritic cells. Chem. Immunol. Allergy 2005 86:120–135.
[10]
Sato A., Iwasaki A. Induction of antiviral immunity requires Toll-like receptor signaling in both stromal and dendritic cell compartments. Proc. Natl Acad. Sci. USA 2004 101, N 46:1624–1629.
[11]
Boullart A. C., Aarntzen E. H., Verdijk P., Jacobs J. F., Schuurhuis D. H., Benitez-Ribas D., Schreibelt G., van de Rakt M. W., Scharenborg N. M., de Boer A., Kramer M., Figdor C. G., Punt C. J., Adema G. J., de Vries I. J. Maturation of monocyte-derived dendritic cells with Toll-like receptor 3 and 7/8 ligands combined with prostaglandin E2 results in high interleukin-12 production and cell migration. Cancer Immunol. Immunother 2008 57, N 11:1589–1597.
[12]
Nguyen-Pham T. N., Lim M. S., Nguyen T. A., Lee Y. K., Jin C. J., Lee H. J., Hong C. Y., Ahn J. S., Yang D. H., Kim Y. K., Chung I. J., Park B. C., Kim H. J., Lee J. J. Type I and II interferons enhance dendritic cell maturation and migration capacity by regulating CD38 and CD74 that have synergistic effects with TLR agonists. Cell. Mol. Immunol 2011 8, N 4:341–347.
[13]
Warger T., Osterloh P., Rechtsteiner G., Fassbender M., Heib V., Schmid B., Schmitt E., Schild H., Radsak M. P. Synergistic activation of dendritic cells by combined Toll-like receptor ligation induces superior CTL responses in vivo. Blood 2006 108, N 2:544–550.
[14]
Krummen M., Balkow S., Shen L., Heinz S., Loquai C., Probst H., Grabbe S. Release of IL-12 by dendritic cells activated by TLR ligation is dependent on MyD88 signaling, whereas TRIF signaling is indispensable for TLR synergy. J. Leukoc. Biol 2010 88, N 1:189–199.
[15]
Khranovska N. Preparation strategy and therapeutic application results of a new generation autological dendritic cell-based anticancer vaccine. Oncology (Special issue) 2010 12, N 1 (43) P. 134–139.
[16]
Khranovska N. M., Grinevich Yu. A. Preparation method of autological dendritic cell-based anticancer vaccines. Methodological recommendation Kyiv: Naukova dumka, 2006 8 p.
[17]
Potebnya G. P., Skivka L. M., Pozur V. V., Rudik M. P., Senchilo N. V., Fedorchuk O. G., Khranovska N. M. Influence of teichoic acid from S. aureus on metabolic activity of macrophages and cytotoxic activity of splenocytes of mice bearing Lewis lung carcinoma. Exp. Oncol 2008 30, N 3 P. 220–223.
[18]
Skivka L. M., Trompak O. O., Kudryavets Y. I., Bezdenezhnykh N. A., Susak Y. M. The effect of NSC-631570 (Ukrain) alone and in combination with pathogen-associated molecules on cell cycle distribution and apoptosis induction of mouse melanoma cells with different biological properties. Exp. Oncol 2010 32, N 2:92–96.
[19]
Pozur V. The effect of teichoic acid from Staphylococcus aureus Wood 46 on the dendritic cells maturation in vitro. Microbiol. Biotechnol 2010 4, N 12:66–72.
[20]
Kim H. S., Shin T. H., Yang S. R., Seo M. S., Kim D. J., Kang S. K., Park J. H., Kang K. S. Implication of NOD1 and NOD2 for the differentiation of multipotent mesenchymal stem cells derived from human umbilical cord blood. PLoS One 2010 5, N 10:15369.
[21]
Franchi L., Park J. H., Shaw M. H., Marina-Garcia N., Chen G., Kim Y. G., Nunez G. Intracellular NOD-like receptors in innate immunity, infection and disease. Cell. Microbiol 2008 10, N 1:1–8.
[22]
Kaisho T., Akira S. Regulation of dendritic cell function through Toll-like receptors. Curr. Mol. Med 2003 3, N 4:373– 385.
[23]
Jin P., Han T. H., Ren .J, Saunders S., Wang E., Marincola F. M., Stroncek D. F. Molecular signatures of maturing dendritic cells: implications for testing the quality of dendritic cell therapies. J. Transl. Med 2010 8:4–18.
[24]
Brenner D., Krammer P. H., Arnold R. Concepts of activated T cell death. Crit. Rev. Oncol. Hematol 2008 66, N 1:52–64.