Biopolym. Cell. 2012; 28(1):44-49.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.00002B
Структура та функції біополімерів
Активність 2',5'-олігоаденілатсинтетази та рівень інтерферону у лімфоцитах щурів в умовах впливу радіації
1Лаврова К. В., 1Компанець І. В., 1Остапченко Л. І.
  1. Навчально-науковий центр «Інститут біології»
    Київського національного університету імені Тараса Шевченка
    вул. Володимирська, 64/13, Київ, Україна, 01601

Abstract

Мета. Дослідити активність 2',5'-олігоаденілатсинтетази (2',5'-ОАS) і рівень інтерферону (IFN) у лімфоцитах щурів, опромінених у дозах 0,25; 0,5; 0,75 і 1,0 Гр, а також вивчити вплив на дані показники індукторів інтерферону. Методи. Застосовано мікрометод визначення титру IFN за антивірусною активністю та спектрофотометричний метод визначення активності 2',5'-ОАS. Результати. Показано зростання титру IFN у лімфоцитах щурів після опромінення у дозах 0,25 і 0,5 Гр. Підвищення дози радіації до 0,75 і 1,0 Гр призводить до зменшення даного показника. Активність 2',5'-ОАS перевищує контроль за усіх застосованих доз; найвищий показник у спленоцитах відповідає дозі 0,25 Гр, тоді як у тимоцитах більші значення виявлено за доз 0,5 і 1,0 Гр. Індуктори IFN стимулюють синтез цитокіну та активність ферменту у лімфоцитах опромінених щурів. Висновки. Зростання активності 2',5'-ОАS і титру IFN у лімфоцитах опромінених тварин можна розцінювати як захисну післяпроменеву реакцію клітин. За опромінення у вищих дозах – 0,75 і 1,0 Гр – досліджувані показники зменшуються, що може бути пов’язано з виникненням у клітині більш серйозних порушень, на подолання яких не вистачає ресурсів її репараційних систем. Підвищення активності 2',5'-ОАS і титру IFN у лімфоцитах на фоні їхньої преінкубації з індукторами IFN може бути свідченням інтенсифікації захисних післяпроменевих механізмів клітин.
Keywords: інтерферон, 2',5'-олігоаденілатсинтетаза, лімфоцити, іонізуюча радіація
Повний текст: (PDF, українською)

References

[1] Goodbourn S., Didcock L., Randall R. E. Interferons: cell signalling, immune modulation, antiviral responses virus countermeasures J. Gen. Virol 2000 81 (Pt. 10):2341–2364.
[2] Samuel C. E. Antiviral actions of interferons Clin. Microbiol. Rev 2001 14, N 4:778–809.
[3] Makedonov G. P., Tskhovrebova L. V., Unzhakov S. V., Semiachkina A. N., Vasil’eva I. M., Zasukhina G. D. Radioadaptive response in lymphocytes of children living in territories polluted by radionuclides as a result of the Chernobyl power plant Radiats Biol. Radioecol 1997 37, N 4:640–644.
[4] Ueta E., Osaki T., Yamamoto T. Yoned K. Induction of differentiation in maxillary adenoid cystic carcinomas by adoptive immunotherapy in combination with chemoradiotherapy. Oral. Oncol 1998 34, N 2:105–111.
[5] Babunina L. Y., Benza T. M., Pravdivaya V. F. Characteristics of rheumatic diseases clinical course in people who were under ionizing radiation influence after the Chernobyl NPP accident. Likarska sprava 1998 N 1:11–13.
[6] Markevich V. E., Zagorodniy M. P. Immunological reactivity in children living under conditions of low doses of ionizing radiation and industrial waste. Likarska sprava 1999 N 3:49–53.
[7] Mikhailik I. V., Prokopova K. V., Ostapchenko L. I. Determination of 2',5'-oligoadenylate level in lymphoid cells of rats spleen and thymus under X-irradiation at 0.5 and 1 g doses. Visnyk of Kyiv University. Ser. Biology 2003 N 41:104–105.
[8] Guide for the care and use of laboratory animals Washington DC: Nat. Acad. press, 1996 220 p.
[9] Ostapchenko L. I., Nalyovina O. E., Kirpenko T. O. Autophosphorylation of cGMP-dependent protein kinases from rat spleen lymphocytes. Visnyk of Kyiv University. Ser. Biology 1998 N 27:23–25.
[10] Boyum A. Separation of leukocytes from blood and bone marrow. Introduction. Scand. J. Clin. Lab. Invest. Suppl 1968 97:7.
[11] Morozov V. G., Khavinson V. H. Immunological function of thymus. Usp. Sovrem. Biol 1984 97, N 1:36–39.
[12] Kovalenko A. L., Kazakov V. I., Slita A. V. Zarubaev V. V., Sukhinin V. P. Intracellular localization of cycloferon, its binding with DNA and stimulation of cytokine expression after exposed of cycloferone. Tsitologiia 2000 42, N 7:659–664.
[13] Chacko M. S., Adamo M. L. Double-stranded ribonucleic acid decreases C6 rat glioma cell number: effects on insulin-like growth factor I gene expression and action. Endocrinology 2000 141, N 10:3546–3555.
[14] Karpov OV, Antonenko SV, Barbasheva OV, Spivak MYa. Inhibition of human immunodeficiency virus reproduction in cell culture by RNA-tilorone molecular complex. Dopovidi Nats Akad Nauk Ukrainy. 1997; (2):168-70.
[15] Ershov F. I., Tazulahova E. B. Interferon inducers – a new generation of immunomodulators. Vestn. Ross. Akad. Med. Nauk 1999 N 4:52–56.
[16] Justesen J., Kjeldgaard N. O. Spectrophotometric pyrophosphate assay of 2',5'-oligoadenylate synthetase. Anal. Biochem 1992 207, N 1:90–93.
[17] Itkes A. V., Tunitskaia V. L., Severin E. S. Mechanisms of the regulation of the biological activity of the cell by 2',5'-oligoadenylate. Biokhimiia 1985 50, N 4:531–542.
[18] Ostapchenko L. I. The action of ionizing radiation on the functional activity of lymphoid cells. Ukr. Biokhim. Zh 1996 68, N 4:55–63.
[19] Kirpenko TO, Ostapchenko LI, Kucherenko ME. The influence of X-ray irradiation on the activity of tyrosine protein kinases in lymphocytes of rat's spleen and thymus. Dopovidi Nats Akad Nauk Ukrainy. 1999;(6):173-6.
[20] Neta R. Modulation of radiation damage by cytokines. Stem Cells 1997 15, Suppl. 2:87–94.
[21] Clave E., Carosella E. D., Gluchman E., Socie G. Radiationenchanced expression of interferon-inducible genes in the KG1a primitive hemapotoietic cell line. Leukemia 1997 11, N 1:114–119.
[22] Player M. R., Torrence P. F. The 2-5A system: modulation of viral and cellular processes through acceleration of RNA degradation. Pharmacol. Ther 1998 78, N 2:55–113.
[23] Itkes A. V. Oligoadenylate and cyclic AMP: interrelation and mutual regulation. Prog. Mol. Subcell. Biol 1994 14:209–221.
[24] Tazulakhova E. B., Paeshina O. V., Guseva T. S. Ershov F. I. Russian experience in screening, analysis and clinical application of novel interferon inducers. J. Interferon Cytokine Res 2001 21, N 2:65–73.
[25] Andronati S. A., Litvinov L. A., Golovenko N. Ya. Oral inducer of endogenous interferon amiksin and its analogs. Zh. Akad. Med. Nauk. Ukr 1999 5, N 4:72–80.
[26] Offermann M. K., Zimring J., Mellits K. H., Hagan M. K., Shaw R., Medford R. M., Mathews M. B., Goodbourn S., Jagus R. Activation of the double-stranded-RNA-activated protein kinase and induction of vascular cell adhesion molecule-1 by poly(I)poly(C) in endothelial cells. Eur. J. Biochem 1995 232, N 1:28–36.