Biopolym. Cell. 2007; 23(5):425-432.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.00077D
Віруси та клітина
Роль білкa pif1 оболонки вірусy ядерного поліедрозу Spodoptera littoralis y процесі первинного інфікування клітин кишечника комахи
1Ревякіна О. Ю., 1Кіхно І. М.
  1. Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
    Вул. Академіка Заболотного, 150, Київ, Україна, 03680

Abstract

Досліджували роль pif1 – білка оболонки вірусу ядерного поліедрозу S. littoralis у процесі проникнення вірусу в колончасту клітину кишечника комахи. Показано, що делетування pif1 з вірусного геному не блокує процесу злиття вірусної і клітинної мембран, що детектується за допомогою методу відновлення флуоресценції октадецил-родамін-В-хлориду. Із застосуванням техніки ЗT-ПЛР показано, що функцією pif1 є обслуговування одного або кількох етапів життєвого циклу вірусу, які передують проникненню вірусної ДНК в ядро, прогнозовано таких, як інтерналізація нуклеокапсиду, його транспорт, вивільнення вірусної ДНК з капсиду і її входження у ядро.
Keywords: проникнення вірусу в клітину, бакуловірус, pif1
Повний текст: (PDF, російською) (PDF, англійською)

References

[1] Hernandez LD, Hoffman LR, Wolfsberg TG, White JM. Virus-cell and cell-cell fusion. Annu Rev Cell Dev Biol. 1996;12:627-61.
[2] Earp LJ, Delos SE, Park HE, White JM. The many mechanisms of viral membrane fusion proteins. Curr Top Microbiol Immunol. 2005;285:25-66.
[3] Shackelton LA, Holmes EC. The evolution of large DNA viruses: combining genomic information of viruses and their hosts. Trends Microbiol. 2004;12(10):458-65.
[4] Blissard GW, Wenz JR. Baculovirus gp64 envelope glycoprotein is sufficient to mediate pH-dependent membrane fusion. J Virol. 1992;66(11):6829-35.
[5] Markovic I, Pulyaeva H, Sokoloff A, Chernomordik LV. Membrane fusion mediated by baculovirus gp64 involves assembly of stable gp64 trimers into multiprotein aggregates. J Cell Biol. 1998;143(5):1155-66.
[6] Granados RR, Lawler KA. In vivo pathway of Autographa californica baculovirus invasion and infection. Virology. 1981;108(2):297-308.
[7] Braunagel SC, Russell WK, Rosas-Acosta G, Russell DH, Summers MD. Determination of the protein composition of the occlusion-derived virus of Autographa californica nucleopolyhedrovirus. Proc Natl Acad Sci U S A. 2003;100(17):9797-802.
[8] Kikhno I, Guti?rrez S, Croizier L, Croizier G, Ferber ML. Characterization of pif, a gene required for the per os infectivity of Spodoptera littoralis nucleopolyhedrovirus. J Gen Virol. 2002;83(Pt 12):3013-22.
[9] Pijlman GP, Pruijssers AJ, Vlak JM. Identification of pif-2, a third conserved baculovirus gene required for per os infection of insects. J Gen Virol. 2003;84(Pt 8):2041-9.
[10] Ohkawa T, Washburn JO, Sitapara R, Sid E, Volkman LE. Specific Binding of Autographa californica M Nucleopolyhedrovirus Occlusion-Derived Virus to Midgut Cells of Heliothis virescens Larvae Is Mediated by Products of pif Genes Ac119 and Ac022 but Not by Ac115. Journal of Virology. 2005;79(24):15258–64.
[11] Kuzio J, Jaques R, Faulkner P. Identification of p74, a gene essential for virulence of baculovirus occlusion bodies. Virology. 1989;173(2):759-63.
[12] Haas-Stapleton EJ, Washburn JO, Volkman LE. P74 Mediates Specific Binding of Autographa californica M Nucleopolyhedrovirus Occlusion-Derived Virus to Primary Cellular Targets in the Midgut Epithelia of Heliothis virescens Larvae. J Virol. 2004;78(13):6786–91.
[13] Braunagel SC, Summers MD. Autographa californica nuclear polyhedrosis virus, PDV, and ECV viral envelopes and nucleocapsids: structural proteins, antigens, lipid and fatty acid profiles. Virology. 1994;202(1):315-28.
[14] Volkman LE, Summers MD, Hsieh CH. Occluded and nonoccluded nuclear polyhedrosis virus grown in Trichoplusia ni: comparative neutralization comparative infectivity, and in vitro growth studies. J Virol. 1976;19(3):820-32.
[15] Bouayyad A, Menezes J. Comparative study of herpes simplex virus receptor expression on human lymphoid cells. Virology. 1990;179(2):905-10.
[16] Wolfersberger M, Luethy P, Maurer A, Parenti P, Sacchi F., Giordana B, et al. Preparation and partial characterization of amino acid transporting brush border membrane vesicles from the larval midgut of the cabbage butterfly (Pieris brassicae). Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Physiology. 1987;86(2):301–8.
[17] Horton HM, Burand JP. Saturable attachment sites for polyhedron-derived baculovirus on insect cells and evidence for entry via direct membrane fusion. J Virol. 1993;67(4):1860-8.
[18] Srinivasakumar N, Ogra PL, Flanagan TD. Characteristics of fusion of respiratory syncytial virus with HEp-2 cells as measured by R18 fluorescence dequenching assay. J Virol. 1991;65(8):4063-9.
[19] O'Reilly DR, Miller LK. Regulation of expression of a baculovirus ecdysteroid UDPglucosyltransferase gene. J Virol. 1990;64(3):1321-8.
[20] Kogan PH, Blissard GW. A baculovirus gp64 early promoter is activated by host transcription factor binding to CACGTG and GATA elements. J Virol. 1994;68(2):813-22.
[21] Chernomordik LV, Zimmerberg J, Kozlov MM. Membranes of the world unite! J Cell Biol. 2006;175(2):201-7.
[22] Melikyan GB, White JM, Cohen FS. GPI-anchored influenza hemagglutinin induces hemifusion to both red blood cell and planar bilayer membranes. J Cell Biol. 1995;131(3):679-91.
[23] Subramanian RP, Geraghty RJ. Herpes simplex virus type 1 mediates fusion through a hemifusion intermediate by sequential activity of glycoproteins D, H, L, and B. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007;104(8):2903-8.
[24] Charlton CA, Volkman LE. Effect of tunicamycin on the structural proteins and infectivity of budded Autographa californica nuclear polyhedrosis virus. Virology. 1986;154(1):214-8.
[25] Kelly DC, Lescott T. Baculovirus Replication: Glycosylation of Polypeptides Synthesized in Trichoplusia ni Nuclear Polyhedrosis Virus-infected Cells and the Effect of Tunicamycin. J Gen Virol. 1983;64(9):1915–26.