Biopolym. Cell. 2007; 23(4):301-306.
Структура та функції біополімерів
Дослідження структурно-функціональних взаємодій поліедрину вірусу ядерного полiедрозу тутового шовкопряда (Bombyx mori) з протеазою та РНК полiедрiв. 3. Поліедри містять малу РНК
1Козлов Е. А., 2Вудмаска М. І., 1Бобровська М. Т., 1Ширіна Т. В.
- Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
Вул. Академіка Заболотного, 150, Київ, Україна, 03680 - НТЦ імунобіотехнології НАН України, АТЗТ НВК Діапроф-мед
вул. Світлицького, 35, Київ, Україна, 04123
Abstract
Показано, що поліедри вирусу ядерного поліедрозу B. mori містять РНК з молекулярною масою 17–18 кДа (50–60 нуклеотидів). Ця, РНК, імовірно, належить до класу малих РНК. Обговорюється її походження.
Keywords: вірус ядерного поліедрозу, РНК поліедрів, мікро-РНК
Повний текст: (PDF, російською) (PDF, англійською)
References
[1]
Kozlov EA, Soguliaeva VM, Levitina TL, Vereshchak V, Serebriany? SV. [Purification of the polyhedral protein of nuclear polyhedrosis virus of mulberry silkworm and association of the protein in solution]. Biokhimiia. 1969;34(4):679-85.
[4]
Kr?tzfeldt J, Poy MN, Stoffel M. Strategies to determine the biological function of microRNAs. Nat Genet. 2006;38 Suppl:S14-9.
[6]
Kozlov EA, Nijazova N, Bobrovskaja MT, Shirina TV. Investigation of structure-function interaction of Bombyx mori nuclear polyhedrosis virus polyhedrin with polyhedra protease and RNA. Effect of protease on polyhedrin dissociation during Sepharose 6B gel-filtration. Biopolym Cell. 2006; 22(3):192-200.
[7]
Hamilton A, Voinnet O, Chappell L, Baulcombe D. Two classes of short interfering RNA in RNA silencing. EMBO J. 2002;21(17):4671-9.
[8]
Maniatis T, Fritsch E, Sambrook J. Molecular cloning. A laboratory manual. New York: Cold Spring Harbor Lab. press, 1982. 545 p.
[9]
Mette MF, Aufsatz W, van der Winden J, Matzke MA, Matzke AJ. Transcriptional silencing and promoter methylation triggered by double-stranded RNA. EMBO J. 2000;19(19):5194-201.
[10]
Kozlov EA, Levitina TL, Gusak NM. The primary structure of baculovirus inclusion body proteins. Evolution and structure-function aspects. Curr Top Microbiol Immunol. 1986;131:135-64.
[15]
Jover-Gil S, Candela H, Ponce MR. Plant microRNAs and development. Int J Dev Biol. 2005;49(5-6):733-44.
[17]
Seggerson K, Tang L, Moss EG. Two genetic circuits repress the Caenorhabditis elegans heterochronic gene lin-28 after translation initiation. Dev Biol. 2002;243(2):215-25.
[18]
Sempere LF, Sokol NS, Dubrovsky EB, Berger EM, Ambros V. Temporal regulation of microRNA expression in Drosophila melanogaster mediated by hormonal signals and broad-Complex gene activity. Dev Biol. 2003;259(1):9-18.
[19]
Bashirullah A, Pasquinelli AE, Kiger AA, Perrimon N, Ruvkun G, Thummel CS. Coordinate regulation of small temporal RNAs at the onset of Drosophila metamorphosis. Dev Biol. 2003;259(1):1-8.
[20]
Carrington JC, Ambros V. Role of microRNAs in plant and animal development. Science. 2003;301(5631):336-8.
[21]
Lee Y, Jeon K, Lee JT, Kim S, Kim VN. MicroRNA maturation: stepwise processing and subcellular localization. EMBO J. 2002;21(17):4663-70.
[22]
Zeng Y, Yi R, Cullen BR. Recognition and cleavage of primary microRNA precursors by the nuclear processing enzyme Drosha. EMBO J. 2005;24(1):138-48.
[23]
Cai X, Hagedorn CH, Cullen BR. Human microRNAs are processed from capped, polyadenylated transcripts that can also function as mRNAs. RNA. 2004;10(12):1957-66.
[24]
Okano K, Vanarsdall AL, Mikhailov VS, Rohrmann GF. Conserved molecular systems of the Baculoviridae. Virology. 2006;344(1):77-87.
[25]
Berezikov E, Cuppen E, Plasterk RHA. Approaches to microRNA discovery. Nat Genet. 2006;38(6s):S2–S7.
