Biopolym. Cell. 2007; 23(2):122-129.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.00075E
Молекулярна біофізика
Електрофоретичне дослідження конформаційних переходів у полі(G) під дією моновалентних катіонів
1Зарудна М. І., 1Степанюгін А. В., 1Потягайло А. Л., 1Говорун Д. М.
  1. Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
    Вул. Академіка Заболотного, 150, Київ, Україна, 03680

Abstract

Вперше методом електрофорезу досліджено конформаційні переходи в полі(G) під дією солі. Показано, що при концент­рації моновалентних катіонів > 10 мМ спостерігається тіль­ки одна зона полімеру, яка відповідає його чотирьохланцюговій формі; при нижчих концентраціях солі визначаються дві зони, що перекриваються. Повільніше мігруюча зона відповідає чотирьохланцюговій формі полі(G), а швидше мігруюча — одно-ланцюговій. Наведено електронні спектри поглинання низки гомополірибонуклеотидів, забарвлених толуїдиновим блакит­ним (ТБ) в агарозних гелях. Показано, що форма спектра залежить як від гомополімеру, так і від його конформації Δλmax спектрів поглинання ТБ у комплексі з одно- і чотирьох- ланцюговою формами полі(G) складає близько 20 нм.
Keywords: полі(G), конформаційні переходи гомо­ полірибонуклеотидів, електрофорез, толуїдиновий блакитний, електронні спектри поглинання.
Повний текст: (PDF, російською)

References

[1] Zarudna MI, Hovorun DM. Self-associated homopolymer tracts of cellular RNAs: physical mechanisms of formation and function. Physics of the Alive. 1999; 7(2): 38-52.
[2] Saenger W. Principles of nucleic acid structure. New York: Springer, 1984; 556 p.
[3] Zarudnaya MI, Potyahaylo AL, Kolomiets IM, Hovorun DM. Auxiliary elements of mammalian pre-mRNAs polyadenylation signals. Biopolym Cell. 2002; 18(6):500-17.
[4] Matunis MJ, Xing J, Dreyfuss G. The hnRNP F protein: unique primary structure, nucleic acid-binding properties, and subcellular localization. Nucleic Acids Res. 1994;22(6):1059-67.
[5] Gwack Y, Kim DW, Han JH, Choe J. Characterization of RNA binding activity and RNA helicase activity of the hepatitis C virus NS3 protein. Biochem Biophys Res Commun. 1996;225(2):654-9.
[6] Achsel T, Stark H, Lührmann R. The Sm domain is an ancient RNA-binding motif with oligo(U) specificity. Proc Natl Acad Sci U S A. 2001;98(7):3685-9.
[7] Zarudnaya MI, Zheltovsky NV. Determination of association constants for the interaction between homopolyribonucleotides and lysine derivative by agarose gel electrophoresis. Mol Biol (Mosk). 1989; 23(1):215–224.
[8] Zarudnaya MI, Zheltovsky NV. Affinity electrophoresis study on the interaction between homopolyribonucleotides and divalent lysine complex. Mol Biol (Mosk). 1992; 26(1):110-7.
[9] Zarudnaia MI, ZHeltovskiĭ NV. [Electrophoretic study of conformational transitions in poly(A) at acid pHs]. Mol Biol (Mosk). 1995;29(5):1040-7.
[10] Zarudnaia MI. [Study of conformational transitions in poly(A) using the buffer capacity method]. Mol Biol (Mosk). 1998;32(3):508-14.
[11] Zarudnaya MI, Potyahaylo AL, Hovorun DM. Conformational transitions of poly(C) and poly(dC): study by the proton buffer capacity method. Biopolym Cell. 2000; 16(6):495-504.
[12] Zarudnaya MI, Samijlenko SP, Potyahaylo AL, Hovorun DM. Structural transitions in polycytidylic acid: proton buffer capacity data. Nucleosides Nucleotides Nucleic Acids. 2002;21(2):125-37.
[13] Fresco JR, Massoulie J. Polynucleotides. V. Helix-coil transition of polyriboguanylic acid. J Am Chem Soc. 1963;85(9):1352–3.
[14] Pochon F, Michelson AM. Polynucleotides. VI. Interaction between polyguanylic acid and polycytidylic acid. Proc Natl Acad Sci U S A. 1965;53(6):1425-30.
[15] Lesnik EA, Kochkina IM, Tikhonenko AS, Varshavskiĭ IaM. [Structure of polyriboguanylic acid in solution]. Mol Biol (Mosk). 1980;14(4):820-9.
[16] Lesnik EA, Maslova RN, Varshavskiĭ IaM. [Influence of ionic strength and temperature on the structure of poly(G) in solution 1H replaced by 3H exchange method]. Mol Biol (Mosk). 1981;15(1):161-6.
[17] Souleil C, Panijel J. Immunochemistry of polyribonucleotides. Study of polyriboinosinic and polyriboguanylic acids. Biochemistry. 1968;7(1):7-13.
[18] Rice J, Lafleur L, Medeiros GC, Thomas GJ. Raman studies of nucleic acids. IX: A salt-induced structural transition in poly(rG). J Raman Spectrosc. 1973;1(2):207–15.
[19] Mergny JL, De Cian A, Ghelab A, Saccà B, Lacroix L. Kinetics of tetramolecular quadruplexes. Nucleic Acids Res. 2005;33(1):81-94.
[20] Zarudnaya MI, Stepanyugin AV, Potyahaylo AL, Hovorun DM. Conformational transitions in homopolyribonucleotides under electrophoresis. IV Congress of Ukrainian Biophysical Society: Abstracts book. Donets'k, 2006:295-6.
[21] Antony T, Atreyi M, Rao MV. Spectroscopic studies on the binding of methylene blue to poly(riboadenylic acid). J Biomol Struct Dyn. 1993;11(1):67-81.
[22] Imae T, Hayashi S, Ikeda S, Sakaki T. Interaction between acridine orange and polyriboadenylic acid. Int J Biol Macromol. 1981;3(4):259–66.
[23] Imae T, Hayashi S, Ikeda S. Calculation of induced circular dichroism of acridine orange-poly(riboadenylic acid) complexes and confirmation of their structure. Macromolecules. 1987;20(3):589–97.