Biopolym. Cell. 1986; 2(6):328-334.
Віруси та клітина
Виявлення і дослідження субгеномної РНК Х-вірусу картоплі
1Грама Д. П., 2Машковський Н. Н.
  1. Інститут мікробіології і вірусології ім. Д. К. Заболотного АН УРСР
    Київ, СРСР
  2. Інститут молекулярної біології і генетики АН УСРС
    Київ, СРСР

Abstract

В інфікованих Х-вірусом картоплі (ХВК) рослинах дурману виявлено вірусоспецифічну, низькомолекулярну РНК (0,3·106), яка гибрідизується з кДНК, синтезованою на РНК ХВК. Вона виявляється в інфікованих рослинах на третій день після зараження, седиментує в лінійному градієнті сахарози в основному між 18S і 5S рибосомними РНК, має послідовність нуклеотидів, що відповідає 3'-кінцю геномної РНК, і транслюється у безклітинній білоксинтезувальній системі в білок з ідентичною білку оболонки ХВК електрофоретичною рухливістю, тобто є субгеномною РНК ХВК для синтезу вірусного білка оболонки.

References

[1] Wodnar-Filipowicz A, Skrzeczkowski LJ, Filipowicz W. Translation of potato virus X RNA into high molecular weight proteins. FEBS Lett. 1980;109(1):151-5.
[2] Pelham HR. Leaky UAG termination codon in tobacco mosaic virus RNA. Nature. 1978;272(5652):469-71.
[3] Benicourt C, Haenni AL. Differential translation of turnip yellow mosaic virus mRNAs in vitro. Biochem Biophys Res Commun. 1978;84(4):831-9.
[4] Morozov SYu, Zakharyev VM, Chernov BK, Prasolov VS, Kozlov YuV, Skryabin KG, Atabekov IG. Analysis of primary structure and localization of the coat protein gene in genomic RNA of potato X virus. Dokl Akad Nauk SSSR. 1983; 271(1):211-5.
[5] Krayev VG, Didenko LF, Maksimenko IA, Tromse LN. Research related to mRNP polysomes isolated from leaves of Datura, it is time-conjugated potato virus X. Bacteriophages. Pushchino, 1982; 161-7.
[6] Krayev VG, Didenko LF, Parkhomenko NI. Investigation of mRNA and proteins comprising the cytoplasmic polysomes mRNP leaves Datura stramonium, infected potato X virus. 16th Conf. Febo: Proc. of reports. Moscow, 1984; 233.
[7] Palukaitis P, Rakowski AG, Alexander DM, Symons RH. Rapid indexing of the sunblotch disease of avocados using a complementary DNA probe to avocado sunblotch viroid. Ann Appl Biol. 1981; 98(2):439-49.
[8] Grama DP. Using short agarose preparative columns for purification of the rod-shaped and filamentous plant viruses. Mikrobiol Zh. 1982; 44(1):78-82.
[9] Fraenkel-Conrat H, Singer B, Tsugita A. Purification of viral RNA by means of bentonite. Virology. 1961;14:54-8.
[10] Garnier M, Mamoun R, Bove JM. TYMV RNA replication in vivo: replicative intermediate is mainly single stranded. Virology. 1980;104(2):357-74.
[11] Zolotukhin SB, Ishchenko ID, Staverskaia OV, Ryndich AV, Kavsan VM. Synthesis and cloning of DNA, complementary to rabbit globin pre-mRNA. Mol Biol (Mosk). 1982;16(1):47-54.
[12] Lehrach H, Diamond D, Wozney JM, Boedtker H. RNA molecular weight determinations by gel electrophoresis under denaturing conditions, a critical reexamination. Biochemistry. 1977;16(21):4743-51.
[13] Seed B. Diazotizable arylamine cellulose papers for the coupling and hybridization of nucleic acids. Nucleic Acids Res. 1982;10(5):1799-810.
[14] Maniatis T., Fritsch E. F., Sambrook J. Molecular cloning. New York: Cold Spring Harbor Lab., 1982. 545 p.
[15] Roberts BE, Paterson BM. Efficient translation of tobacco mosaic virus RNA and rabbit globin 9S RNA in a cell-free system from commercial wheat germ. Proc Natl Acad Sci U S A. 1973;70(8):2330-4.
[16] Johnston FB, Stern H. Mass isolation of viable wheat embryos. Nature. 1957;179(4551):160-1.
[17] Ricciardi RP, Goodman RM, Gottlieb D. Translation of PVX RNA in vitro by wheat germ. I. Characterization of the reaction and product size. Virology. 1978;85(1):310-4.
[18] Bruening G, Beachy RN, Scalla R, Zaitlin M. In vitro and in vivo translation of the ribonucleic acids of a cowpea strain of tobacco mosaic virus. Virology. 1976;71(2):498-517.
[19] Laemmli UK. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 1970;227(5259):680-5.
[20] Bonner WM, Laskey RA. A film detection method for tritium-labelled proteins and nucleic acids in polyacrylamide gels. Eur J Biochem. 1974;46(1):83-8.
[21] Palukaitis P, Garc?a-Arenal F, Sulzinski MA, Zaitlin M. Replication of tobacco mosaic virus. VII. Further characterization of single- and double-stranded virus-related RNAs from TMV-infected plants. Virology. 1983;131(2):533-45.
[22] Otal T, Hari V. Detection and cell-free translation of subgenomic RNAs of tobacco etch virus. Virology. 1983;125(1):118-26.
[23] Dougherty WG. Analysis of viral RNA isolated from tobacco leaf tissue infected with tobacco etch virus. Virology. 1983;131(2):473-81.
[24] Grama DP, Mashkovsky NN, Melnik AI, Kushnirenko OA. The presence of poly(A) sequence in RNA of potato virus X. Mikrobiol Zh. 1986; 48(1):82-90.
[25] Hunter TR, Hunt T, Knowland J, Zimmern D. Messenger RNA for the coat protein of tobacco mosaic virus. Nature. 1976;260(5554):759-64.
[26] Siegel A, Hari V, Montgomery I, Kolacz K. A messenger RNA for capsid protein isolated from tobacco mosaic virus-infected tissue. Virology. 1976;73(2):363-71.
[27] Klein C, Fritsch C, Briand JP, Richards KE, Jonard G, Hirth L. Physical and functional heterogeneity in TYMV RNA: evidence for the existence of an independent messenger coding for coat protein. Nucleic Acids Res. 1976;3(11):3043-61.
[28] Watanabe Y, Emori Y, Ooshika I, Meshi T, Ohno T, Okada Y. Synthesis of TMV-specific RNAs and proteins at the early stage of infection in tobacco protoplasts: transient expression of the 30K protein and its mRNA. Virology. 1984;133(1):18-24.