Biopolym. Cell. 2003; 19(5):440-444.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.000672
Клітинна біологія
Генерація активних форм кисню нейтрофілами при взаємодії з монокарбоксицелюлозою з різним вмістом карбоксильних груп
1Крюков А. А., 1Семенкова Г. М., 1Капуцький В. Є., 1Черенкевич С. М.
  1. Білоруський державний університет
    просп. Фр. Скорини 4, Мінськ, Білорусь, 220050

Abstract

Методом люмінолзалежної хемілюмінесценції вивчено вплив монокарбоксицелюлози (МКЦ) з різним вмістом карбоксиль­них груп на активуючі кисень системи нейтрофілів крові здорових людей. Додавання до суспензії клітин МКЦ спричи­нює зменшення виходу активних форм кисню (АФК) на різних стадіях процесу активації клітин адгезією до скла та частин­ками латексу. Отриманий ефект не залежить від ступеня адгезивності нейтрофілів до основи, виготовленої з МКЦ, та визначається лише концентрацією СООН-груп в МКЦ: зро­стання вмісту карбоксильних груп від 0,26 до 16 % призво­дить до зниження виходу АФК у нейтрофілах:. МКЦ спричи­нює зменшення активності мієлопероксидази (МПО) у мо­дельній системі МПО–Н2O2–люмінол.
Повний текст: (PDF, російською)

References

[1] Abaev IuK, Kaputski? VE, Adarchenko AA, Sobeshchukh OP. [Mechanism of the antibacterial action of monocarboxycellulose and other ion-exchange derivatives of cellulose]. Antibiot Med Biotekhnol. 1986;31(8):624-8.
[2] Abaev IuK, Kaputskiy VE. Methodological aspects of the characteristics of the sorption properties of dressings. Proceedings of the 1st Congress of Surgeons. Ed AN. Kosintsa. Vitebsk, 1996;147-8.
[3] Abaev IuK, Kaputskiy VE, Adarchenko AA. Development and application of antiseptic dressings prolonged action. Proceedings of the 1st Congress of Surgeons. Ed AN. Kosintsa. Vitebsk, 1996;151-2.
[4] Kaputskiy VE, Yurkshtovich TL. Pharmaceutical formulations based on cellulose. Minsk: Universitetskoe , 1989; 111 p.
[5] Abaev IuK, Kaputskiy VE. Colloid-chemical approaches to optimize the use of cellulose dressings in modern conditions. Proceedings of the 1st Congress of Surgeons. Ed AN. Kosintsa. Vitebsk. 1996:153-4.
[6] Smirnova EN, Semenkova GN, Kovalenko EI, Gerein V, Cherenkevich SN. Generation of active oxygen forms by neutrophils and granulocytopoiesis in patients with acute lymphoblastic leukemia under therapy with use of G-CSF Granulocyte. Acute Leukemias VII. Eds W. Hiddemann. Berlin; Heidelberg: Springer, 1998:387-93.
[7] Beyum A. Isolation of lymphocytes, granulocytes and macrophages. Lymphocytes: isolation, fractionation and characterization. M.: Meditsina, 1980;9-36.
[8] Semenkova GN, Smirnova EN, Kovalenko EI, Gerein V, Cherenkevich SN. Oxygen activating ability of neutrophils of children with non-Hodgkin's lymphomas at therapy with G-CSF. Exp Oncol. 1997;19(2): 153-6.
[9] Albrecht D, Jungi TW. Luminol-enhanced chemiluminescence induced in peripheral blood-derived human phagocytes: obligatory requirement of myeloperoxidase exocytosis by monocytes. J Leukoc Biol. 1993;54(4):300-6.
[10] Kliubin IV, Gamale? IA. [NADPH oxidase--a specialized enzyme complex for the formation of active oxygen metabolites]. Tsitologiia. 1997;39(4-5):320-40.
[11] Semenkova GN. Generation of reactive oxygen species in the stimulation of lymphocytes and neutrophils in human blood: Auth Thesis. ... kand biol nauk. Minsk, 1989. 21 p.
[12] Timoshenko AV, Cherenkevich SN. Glycobiological aspects of the activation of phagocytes respiratory chain. Biopolym Cell. 1994; 10(1):58-66 .
[13] Babior BM. NADPH oxidase: an update. Blood. 1999;93(5):1464-76.
[14] Glebov RN. Endocytosis and exocytosis. M.: Vyshch Shkola, 1987; 95 p.
[15] Ward RA, Nakamura M, McLeish KR. Priming of the neutrophil respiratory burst involves p38 mitogen-activated protein kinase-dependent exocytosis of flavocytochrome b558-containing granules. J Biol Chem. 2000;275(47):36713-9.
[16] DeLeo FR, Renee J, McCornick S, Nakamuro M, Apicella M, Weiss JP. Neutrophils exposed to bacterial lipopolysaccharide upregulate NADPH oxidase assembly. J Clin Invest. 1998; 101(2):455-63.
[17] Hampton MB, Kettle AJ, Winterbourn CC. Inside the neutrophil phagosome: oxidants, myeloperoxidase, and bacterial killing. Blood. 1998;92(9):3007-17.
[18] Belova LA. Biochemistry of inflammatory processes and vascular injury. Role of neutrophils: a review. Biochemistry (Mosc). 1997;62(6):563-70.
[19] Vered M, Simon S, Dearing R, Janoff A. Inhibition of human neutrophil elastase by bacterial polyanions. Exp Lung Res. 1988;14(1):67-83.
[20] Smolen JE, Petersen TK, Koch C, O'Keefe SJ, Hanlon WA, Seo S, Pearson D, Fossett MC, Simon SI. L-selectin signaling of neutrophil adhesion and degranulation involves p38 mitogen-activated protein kinase. J Biol Chem. 2000;275(21):15876-84.
[21] Semenkova GN, Cherenkevich SN. Reactive oxygen species and the functional response of immune cells. Photobiology and membrane biophysics. Ed. ID Volotovskiy. Minsk, 1999;209-20.