Biopolym. Cell. 2000; 16(1):53-59.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.000556
Віруси та клітина
Вплив деяких моно- і полісахаридів на локалізацію вірусної інфекції та індуковану вірусостійкість у рослин
1Коваленко О. Г., 1Телегеєва Т. А., 1Штакун А. В., 1Погоріла З. О.
  1. Інститут мікробіології і вірусології ім. Д. К. Заболотного НАН України
    вул. Академіка Заболотного, 154, Київ, Україна, 03680

Abstract

Антивірусна активність α(1→2, 1→3, 1→)- і β(1→3, 1→4)-зв'язаного дріжджових мананів у рослинах тютюну в помірних концентраціях (10—100 мкг/мл) залежить від наявності природ­ного механізму локалізації інфекції вірусу тютюнової мозаїки (ВТМ). Активність полісахаридів блокується в присутності заміщених моносахаридів, зокрема, α-метил-О-глікозиду та α-метил-D-манозиду. З іншого боку, α-метилглікозиди блокують локалізацію інфекції та розвиток локальної і системної індукованої стійкості рослин до повторної інокуляції ВТМ. Це явище має місце в рослинах Nicotiana tabacum і Datura stramonium, які реагують на дріжджові манани активацією захисних механізмів, але не в рослинах Gomphrena globosa, малочутливих до них. Одержані дані узгоджуються з припущенням щодо регуляторної ролі глікомоно- та глікополімерів і специфічних до них лектинів у реалізації стійкості рослин до вірусів.
Повний текст: (PDF, українською)

References

[1] Cooper E. Comparative Immunology. Prentice-Hall. 1976;
[2] Lyubimova AV, Salkova EG. Lectin-carbohydrate interactions in plant-pathogen relationships. Prikl Biokhim Mikrobiol. 1988; 24(5):595-606.
[3] Albersheim P, Darvil G. Oligosaccharins: novel molecules that can regulate growth, development, reproduction, and defense against disease in plants. Sci Am. 1985; 253(3): 58-67.
[4] Brown JC, Hunt RC. Lectins. Int Rev Cytol. 1978;52:277-349.
[5] Sundaresan RVS, Kimmins WC. Effect of virus infection on the cell wall composition of lesions on lesion host Phaseolus vulgaris. Ann Bot. 1981; 47(2): 287-9.
[6] Fritig B, Kauffman S, Dumas B, Geoffroy P, Kopp M, Legrand M. Mechanism of hypersensivity reaction in plants. Plant Resistance to Viruses. Ciba Fundation Symposium 133. Chichester; New York: Wiley et Sons, 1987: 92-108.
[7] Wieringa-Brants DH, Dekker WC. Induced Resistance in Hypersensitive Tobacco Against Tobacco Mosaic Virus by Injection of Intercellular Fluid from Tobacco Plants with Systemic Acquired Resistance. J Phytopathol. 1987;118(2):165–70.
[8] Modderman PW, Schot CP, Klis FM, Wieringa-Brants DH. Acquired Resistance in Hypersensitive Tobacco against Tobacco Mosaic Virus, Induced by Plant Cell Wall Components. J Phytopathol. 1985;113(2):165–70.
[9] Kovalenko AG, Barkalova AA, Bobyr AD. Effect of yeast polysaccharides on the tomato affection with tobacco mosaic virus. Mikrobiol Zh. 1984;46(4):58-62.
[10] Kovalenko AG, Kovalenko EA, Grabina TD. Lectine-binding and antiviral activity of the yeast mannanes in supersensitive plants. Mikrobiol Zh. 1991; 53(2):83-9.
[11] Kovalenko AG. Protein-carbohydrate interaction in therealization of plant resistance to viruses. Mikrobiol Zh. 1993; 55(6):74-91.
[12] Kovalenko AG, Scherbatenko IS, Oleschenko LT. Infection of potato mesophyll protoplasts by tobacco mosaic virus. Niol Nauki. 1985; (2): 42-7.
[13] Kovalenko AG, Shashkov AS, Vasiljev VN, Telegeeva TA. The structural features and biological activity of Candida spec. yeast mannans. Biopolym. Cell. 1995; 11(3-4):88-95.
[14] Blinov N, Vitovskaya TA, Kovalenko AG, Maruska IB, Marikhin VA. Study of mannan Rhodotorula rubra and its fractions. Prikl Biokhim Mikrobiol. 1980; 16(2): 249-53.
[15] Shimomura T, Ohashi Y. Conditioning of local lesion formation by a brief heat or cold treatment of leaves systemically infected with TMV. Virology. 1971;43(2):531-2.
[16] Kovalenko AG. [Antiviral properties of microbial polysaccharides--a review]. Zentralbl Mikrobiol. 1987;142(4):301-10.
[17] Loebenstein G, Spiegel S, Gera A. Localized resistance and barrier substances. Active Defence Mechanisms in Plants. New York; London: Plenum press, 1982: 211-30.
[18] Kovalenko AG, Shcherbatenko IS. Localization of infection and development of induced resistance to TMV in Nicotiana didebta Ternov. and Nicotiana tabacum L. Mikrobiol Zh. 1986; 48(4):51-5.
[19] Kovalenko AG, Barkalova AA, Bobyr AD. Effect of actinomycin D on antiviral activity of yeast mannan preparations in plants hypersensitive to TMV. Mikrobiol Zh. 1986; 48(4):58-62.
[20] Kovalenko AG, Grabina TD, Kolesnik LV, Didenko LF, Oleschenko LT, Olevinskaya ZM, et al. Virus Resistance Induced with Mannan Sulphates in Hypersensitive Host Plants. J Phytopathol. 1993;137(2):133–47.
[21] Kovalenko AG, Bobyr AD, Votzelko SK, Menzel G, Barkalova AA. Untersuchungen ?ber gegen Pflanzenviren wirksame Hemmstoffe aus Hefepilzen. J Phytopathol. 1977;88(4):322–40.
[22] Pospieszny H, Chirkov S, Atabekov J. Induction of antiviral resistance in plants by chitosan. Plant Science. 1991;79(1):63–8.
[23] Kovalenko AG. Phytolectins: a possible base of antiviral activity of carbohydrate polymers in the hypersensitive host plant. Recent Results in Plant Virology: Symp. held in the Castle Reinhardsbrunn (DDR, March 23rd-March 27th, 1986): Summaries. Berlin, 1986: 50-51.
[24] Guly?s A, Farkas GL. Is Cell-to-Cell Contact Necessary for the Expression of the N-Gene in Nicotiana tabacum cv. Xanthi nc. Plants Infected by TMV? J Phytopathol. 1978;91(2):182–7.
[25] Wagih EE, Coutts RHA. Similarities in the soluble protein profiles of leaf tissue following either a hypersensitive reaction to virus infection or plasmolysis. Plant Sci Lett. 1981;21(1):61–9.