Biopolym. Cell. 1998; 14(5):456-462.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.0004EC
Структура та функції біополімерів
Вплив умов дегідратації та іонної сили середовища регідратації на осмотичний відгук і рівень лізису регідратованих еритроцитів
1Пателарос С. В.
  1. Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України
    23, Переяслівська вул., Харків, Україна, 61015

Abstract

В результаті проведених досліджень показано, що між об’ємними змінами еритроцитів та рівнем гемолізу не існує прямого зв'язку. Це свідчить про те, що постгіпертонічний лізис (ПЛ) не розвивається за колоїдно-осмотичним механізмом, а обумовлений формуванням мембранних пошкоджень на етапі регідратації. Останні регулюються і можуть бути пригнічені зростанням іонної сили середовища регідратації. Клітини в умовах гіпертонічної інкубації не пошкоджуються, однак підвищується їхня чутливість до наступних мембранних дефектів. ПЛ вирізняється більше в неелектролітних (сахарозних) середовищах порівняно з електролітними (NaCl, ChCl), де мембрани відновлюють свою первинну проникність повільніше, ніж у сахарозних середовищах.
Повний текст: (PDF, російською)

References

[1] Boldyrev AA. Introduction to bio membranology. M.: Izd MGU, 1990. 206 p.
[2] Chernitskiy EA, Vorobey AV. Structure and function of erythrocyte membranes. Minsk : Nauka i tekhnika, 1981; 316 p.
[3] Mazur P, Cole KW. Influence of cell concentration on the contribution of unfrozen fraction and salt concentration to the survival of slowly frozen human erythrocytes. Cryobiology. 1985;22(6):509-36.
[4] Lovelock JE. The haemolysis of human red blood-cells by freezing and thawing. Biochim Biophys Acta. 1953;10(3):414-26.
[5] Zade-Oppen AM. Posthypertonic hemolysis in sodium chloride systems. Acta Physiol Scand. 1968;73(3):341-64.
[6] Zade-Oppen AM. The effect of mannitol, sucrose, raffinose and dextran on posthypertonic hemolysis. Acta Physiol Scand. 1968;74(1):195-206.
[7] Pegg DE, Diaper MP. On the mechanism of injury to slowly frozen erythrocytes. Biophys J. 1988;54(3):471-88.
[8] Ilani A, Granoth R. The pH dependence of the hemolytic potency of bile salts. Biochim Biophys Acta. 1990;1027(2):199-204.
[9] Young JD, Leong LG, DiNome MA, Cohn ZA. A semiautomated hemolysis microassay for membrane lytic proteins. Anal Biochem. 1986;154(2):649-54.
[10] AS. N 1573429. An apparatus for determining an optical density of suspensions of biological. AV. Degtyarev, SV Rudenko, TP Bondarenko. BI 1990.
[11] Akeson SP, Mel HC. Erythrocyte and ghost cytoplasmic resistivity and voltage-dependent apparent size. Biophys J. 1983;44(3):397-403.
[12] Richieri GV, Mel HC. Membrane and cytoplasmic resistivity properties of normal and sickle red blood cells. Cell Biophys. 1986;8(4):243-58.
[13] Zade-Oppen AM. Posthypertonic hemolysis in a sucrose system. Experientia. 1970;26(10):1087-8.
[14] Woolgar AE, Morris GJ. Some combined effects of hypertonic solutions and changes in temperature on posthypertonic hemolysis of human red blood cells. Cryobiology. 1973;10(1):82-6.
[15] Daw A, Farrant J, Morris GJ. Membrane leakage of solutes after thermal shock or freezing. Cryobiology. 1973;10(2):126-33.
[16] Bondarenko VA. Development and prevention of heat-shock of red blood cells: Thesis. ... dr biol. nauk. Kharkiv, 1990; 446 p.
[17] Pozdnyakov VV, Bondarenko VA. The interaction between the initial osmotic environmental conditions and resistance of erythrocytes to hypertonic stress in 4 M NaCl. Kriobiologiia. 1989; (1): 40-3