Biopolym. Cell. 1996; 12(2):47-55.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.000421
Клітинна біологія
Стійкість до канаміцину рослин тютюну при дії препаратів ДНК на насіння
1Кацан В. А., 1Потопальський А. І., 1Леськів М. Є.
  1. Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
    Вул. Академіка Заболотного, 150, Київ, Україна, 03680

Abstract

Вивчено вплив екзогенної ДНК (еДНК) плазміди pCAMVNEO, використаної як окремо, так і в суміші з еДНК пасльону чорного (Solanum nigrum) солестійкого та рТі8628, на стійкість до канаміцину рослин тютюну сорту Крупнолистий 20 у першому тадругому поколіннях (Т1 та Т2) при прямій дії на насіння. Виявлено стійкість до канаміцину в переважної більшості рослин Т1. Резистентні у Т1 рослини стали чутливими до антибіотика в Т2. Серед більшості варіантів досліду не було знайдено взаємозв'язку між статусом стійкості до канаміцину та вмістом основних групп фотосинтетичних пігментів. Дискутуються можливі механізми стійкості тютюну в Т1 до канаміцину.
Повний текст: (PDF, російською)

References

[1] Semenovich ND, Serdyuchenko EV, Pozhidaeva LI. On a kanamycin action on the formation of photosynthetic apparatus in wheat seedlings. Fiziologiia rasteniy. 1990; 37(2):220-5.
[2] Kessler RM, Kolokolova NS, Ivanova EB, Prikhozhenko Eya, Taran SF. Effects of erythromycin and plastid mutation on plastid ultrastructure, chlorophyll content, and beta-glycosidase activities in sunflower. Fiziologiia rasteniy. 1994; 41(3):399-403.
[3] Chesnokov YuV, Shevkun OB, Glushakova AA. Resistance of in vitro germinating tomato pollen to kanamycin. Biopolym Cell. 1993; 9(6):66-70.
[4] Weide R, Koornneef M, Zabel P. A simple, nondestructive spraying assay for the detection of an active kanamycin resistance gene in transgenic tomato plants. Theor Appl Genet. 1989;78(2):169-72.
[5] Weinreich MD, Mahnke-Braam L, Reznikoff WS. A functional analysis of the Tn5 transposase. Identification of domains required for DNA binding and multimerization. J Mol Biol. 1994;241(2):166-77.
[6] Fromm ME, Taylor LP, Walbot V. Stable transformation of maize after gene transfer by electroporation. Nature. 1986 Feb 27-Mar 5;319(6056):791-3.
[7] Davey MR, Rech EL, Mulligan BJ. Direct DNA transfer to plant cells. Plant Mol Biol. 1989;13(3):273-85.
[8] T?pfer R, Gronenborn B, Schell J, Steinbiss HH. Uptake and transient expression of chimeric genes in seed-derived embryos. Plant Cell. 1989;1(1):133-9.
[9] Elanskaya IV, Allakhverdiev SI, Boichenko VA, Klimov VV, Demeter S, Timofeev KN, Shestakov SV. Photochemical Characteristics of cyanobacterium synechocystis sp PCC6803 mutants with impaired photosystem II proteins. Biokhimiia. 1994; 59(8):1245-53.
[10] Potopalsky AI, Katsan VA, Lesjkiv ME. Effect of native and modificated e-DNA on biosynthesis of photosynthetic pigments in Nicotiana tabacum L. 1. Content of chlorophylls and carotenoides in the plants of the first generation. Biopolym Cell. 1995; 11(2):88-99.
[11] Potopalsky AI, Tkachuk ZYu. Tumors and growths in plants. K. Vyshcha shkola, 1985. 184 p.
[12] Hosiers M. The interaction of agrobacterium Ti-plasmid DNA and plant cells. Biol Cell. 1982; 43(1-2): 6.
[13] Patskovsky YuV, Gaiduk VV, Veselovsky OV, Zubko EI, Pasternak TP, Yurkevitch LN, Mashtaler SG, Potopalsky AI. Detection of pUC19-homologous repeated sequences into genome of several species of higher plants. Biopolym Cell. 1992; 8(3):23-9.
[14] Voloshchuk TP, Patskovski? IuV, Potopal'ski? AI. Alkylation of nucleic acid components by ethyleneimine derivatives. I. Alkylation of bases. Bioorg Khim. 1990;16(7):981-90.
[15] Murashige T, Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant. 1962;15(3):473–97.
[16] Shlyk AA. On spectrophotometric determination of chlorophylls a and b. Biokhimiia. 1968;33(2):275-85.
[17] Rokitsky PF Biological Statistics. Minsk: Vysheyshaya Shkola., 1967. 328 p.
[18] Lunin MS, Popova N. Drop method in plant virus diagnosis. M .: Selkhozgiz, 1937. 47 p.
[19] Ponstein AS, Bres-Vloemans SA, Sela-Buurlage MB, van den Elzen PJ, Melchers LS, Cornelissen BJ. A novel pathogen- and wound-inducible tobacco (Nicotiana tabacum) protein with antifungal activity. Plant Physiol. 1994;104(1):109-18.
[20] Vernooij B, Friedrich L, Morse A, Reist R, Kolditz-Jawhar R, Ward E, Uknes S, Kessmann H, Ryals J. Salicylic Acid Is Not the Translocated Signal Responsible for Inducing Systemic Acquired Resistance but Is Required in Signal Transduction. Plant Cell. 1994;6(7):959-965.
[21] Xu Y, Chang P, Liu D, Narasimhan ML, Raghothama KG, Hasegawa PM, Bressan RA. Plant Defense Genes Are Synergistically Induced by Ethylene and Methyl Jasmonate. Plant Cell. 1994;6(8):1077-1085.
[22] Cordero MJ, Ravent?s D, San Segundo B. Expression of a maize proteinase inhibitor gene is induced in response to wounding and fungal infection: systemic wound-response of a monocot gene. Plant J. 1994;6(2):141-50.
[23] Legrand M, Kauffmann S, Geoffroy P, Fritig B. Biological function of pathogenesis-related proteins: Four tobacco pathogenesis-related proteins are chitinases. Proc Natl Acad Sci U S A. 1987;84(19):6750-4.
[24] Alexander D, Goodman RM, Gut-Rella M, Glascock C, Weymann K, Friedrich L, Maddox D, Ahl-Goy P, Luntz T, Ward E, et al. Increased tolerance to two oomycete pathogens in transgenic tobacco expressing pathogenesis-related protein 1a. Proc Natl Acad Sci U S A. 1993;90(15):7327-31.