Biopolym. Cell. 1995; 11(2):76-81.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.0003E3
Окис азоту у регенеруючій печінці щурів
1Оболенська М. Ю., 1Ванін О. Ф., 1Мордвинцев П. І., 1Декер К.
  1. Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
    Вул. Академіка Заболотного, 150, Київ, Україна, 03680

Abstract

Вміст окису азоту у регенеруючій печінці щурів визначали по інтенсивності сигналу електронного парамагнітного резонансу (ЕПР), викликаного мононітрозильним комп­лексом заліза з діетилтіокарбаматом (ДЕТК). «Пасткою» для продукованого ендогенно окису азоту слугували передутворені in vivo комплекси внутрішньоклітинного негемового заліза з введеним ДЕТК. Встановлено, що зміни вмісту окису азоту ко­релюють з періодичністю регенераційного процесу. Перше підвищення рівня вмісту окису азоту спостерігається через годину після часткової гепатектомії (ЧГЕ), збі­гаючись у часі з первинними відповідями реакції печінки на пошкодження. Друге, більш виразне підвищення, відмічається через 6 год після ЧГЕ, коли гепатоцити вступають до клітинного циклу, і визначається переважно паренхімними клітинами. Наступний спад відповідає максимуму ДНК-синтетичної активності. Поступове зро­стання вмісту окису азоту спостерігається протягом періоду, що охоплює кінець першого та початок другого клітинного циклу гепатоцитів, а також перехід непаренхімних клітин від стану спокою до ділення.
Повний текст: (PDF, російською)

References

[1] Curran RD, Billiar TR, Stuehr DJ, Ochoa JB, Harbrecht BG, Flint SG, Simmons RL. Multiple cytokines are required to induce hepatocyte nitric oxide production and inhibit total protein synthesis. Ann Surg. 1990;212(4):462-9.
[2] Gaillard T, Mülsch A, Busse R, Klein H, Decker K. Regulation of nitric oxide production by stimulated rat Kupffer cells. Pathobiology. 1991;59(4):280-3.
[3] Obolenskaya MYu, Bernauer H, Decker K. Do Kupffer cells take part in triggering liver regeneration?. Cells of the hepatic sinusoid. Eds. D. L. Knook, E. Wisse. Leiden, 1993. Vol. 4: 76-8.
[4] Lepoivre M, Chenais B, Yapo A, Lemaire G, Thelander L, Tenu JP. Alterations of ribonucleotide reductase activity following induction of the nitrite-generating pathway in adenocarcinoma cells. J Biol Chem. 1990;265(24):14143-9.
[5] Rapoport RM, Murad F. Agonist-induced endothelium-dependent relaxation in rat thoracic aorta may be mediated through cGMP. Circ Res. 1983;52(3):352-7.
[6] Moncada S, Palmer RM, Higgs EA. Nitric oxide: physiology, pathophysiology, and pharmacology. Pharmacol Rev. 1991;43(2):109-42.
[7] Vanin AF, Mordvintcev PL, Kleschev AL. Appearance of nitrogen oxide in animal tissues in vivo H. Stud Biophys. 1984; 102: 135-42.
[8] Obolenskaya MYu, Prima VI, Gerasimova TB, Platonov OM. Partial restriction of genome expression – a component of its work reprogramming in regenerating liver of mammals. Biopolym Cell. 1989; 5(2):79-88.
[9] Higgins G, Anderson R. Experimental pathology of the liver: restoration of the liver of the white rats following partial surgical removal. Arch Pathol. 1931; 31:186-202.
[10] Kawada N, Klein H, Decker K. Eicosanoid-mediated contractility of hepatic stellate cells. Biochem J. 1992;285 ( Pt 2):367-71.
[11] Kubrina LN, Caldwell WS, Mordvintcev PI, Malenkova IV, Vanin AF. EPR evidence for nitric oxide production from guanidino nitrogens of L-arginine in animal tissues in vivo. Biochim Biophys Acta. 1992;1099(3):233-7.
[12] Tsanev R. Cell cycle and liver function. Results and problems in cell differentiation. Berlin : Springer, 1975. Vol. 7: 197-248.
[13] Widmann JJ, Fahimi HD. Proliferation of mononuclear phagocytes (Kupffer cells) and endothelial cells in regenerating rat liver. A light and electron microscopic cytochemical study. Am J Pathol. 1975;80(3):349-66.
[14] Iakovlev AIu. Hepatocyte dynamic reserve: the mechanism for the assurance of specialized functions in the regenerating liver. Tsitologiia. 1979;21(11):1243-52.
[15] Fausto N, Mead JE. Regulation of liver growth: protooncogenes and transforming growth factors. Lab Invest. 1989;60(1):4-13.
[16] Tewari M, Dobrzanski P, Mohn KL, Cressman DE, Hsu JC, Bravo R, Taub R. Rapid induction in regenerating liver of RL/IF-1 (an I kappa B that inhibits NF-kappa B, RelB-p50, and c-Rel-p50) and PHF, a novel kappa B site-binding complex. Mol Cell Biol. 1992;12(6):2898-908.
[17] Hofmann F, Decker K. Comparative Metabolic Studies on Liver Sinusoidal Cells and Different Types of Macrophages. Hoppe-Seyler´s Zeitschrift für physiologische Chemie. 1979;360(2):905–12.
[18] Goridis C, Zwiller J, Reutter W. Guanylate cyclase activity and cyclic nucleotide concentrations during liver regeneration after experimental injury. Biochem J. 1977;164(1):33-9.
[19] Weinstein Y, Chambers DA, Bourne HR, Melmon KL. Cyclic GMP stimulates lymphocyte nucleic acid synthesis. Nature. 1974;251(5473):352-3.
[20] Takagi K, Isobe Y, Yasukawa K, Okouchi E, Suketa Y. Nitric oxide blocks the cell cycle of mouse macrophage-like cells in the early G2+M phase. FEBS Lett. 1994;340(3):159-62.
[21] Obolenskaia MIu. Age and DNA synthesis in regenerating rat liver. Tsitologiia. 1976;18(7):857-61.
[22] Lepoivre M, Boudbid H, Petit JF. Antiproliferative activity of gamma-interferon combined with lipopolysaccharide on murine adenocarcinoma: dependence on an L-arginine metabolism with production of nitrite and citrulline. Cancer Res. 1989;49(8):1970-6.
[23] Pines J, Hunter T. p34cdc2: the S and M kinase? New Biol. 1990;2(5):389-401.
[24] riggs RG, Derubertis FR. Increased responsiveness of the hepatic guanylate cyclase-guanosine 3',5'-monophosphate system to nitrosoguanidine following partial hepatectomy. Biochim Biophys Acta. 1980;628(4):425-37. ttp://
[25] Obolenskaia MIu, Gerasimova VV. Role of complex-bound non-hemin iron in cell division. Ukr Biokhim Zh. 1972;44(5):577-9.
[26] Vanin AF, Mitrokhin IuI, Mordvintsev PI, Todorov IN. The appearance of nitric oxide in the rat liver in sharp fluctuations in protein and DNA biosynthesis evoked by cycloheximide at a sublethal dose. Dokl Akad Nauk SSSR. 1990;315(5):1267-9.