Biopolym. Cell. 1994; 10(1):67-71.
Одержання трансгенних рослин картоплы, експресуючих
мутантний ген ацетолактатсинтази Arabidopsis thaliana
- Інститут клітинної біології та генетичної інженерії НАН України
вул. Академіка Заболотного, 148, Київ, Україна, 03680
Abstract
Рослини картоплі сортів Луговськой i Дезіреє трансформовано конструкциями, які містять мутантний ген ацетолактатсинтази Arabidopsis thaliana під контролем потужного конститутивного промотора, в результаті кокультивування різних експлантатів з Agrobacterium tumefaciens. 3 використанням методів Саузерн- та Нозерн-блотинг-гібридизації показано інтеграцію гена до складу геномної ДНК i його експресію на рівні транскрипції.
Повний текст: (PDF, російською)
References
[1]
LaRossa RA, Schloss JV. The sulfonylurea herbicide sulfometuron methyl is an extremely potent and selective inhibitor of acetolactate synthase in Salmonella typhimurium. J Biol Chem. 1984;259(14):8753-7.
[2]
Shaner DL, Anderson PC, Stidham MA. Imidazolinones: potent inhibitors of acetohydroxyacid synthase. Plant Physiol. 1984;76(2):545-6.
[3]
Subramanian MV, Gerwick BC. Inhibition of acetolactat synthase by triasolo-pyrimidines. A review of recent developments. Biocatalysis in agricultural biotechnology. Eds. J. R. Whitaker, P. E. Sonnet. Amer. Chem. Soc. Symp. Ser. 1989; 389: 227-228.
[4]
Chaleff RS, Ray TB. Herbicide-resistant mutants from tobacco cell cultures. Science. 1984;223(4641):1148-51.
[5]
Haughn GW, Somerville C. Sulfonylurea-resistant mutants of Arabidopsis thaliana. Mol Gen Genet. 1986;204(3):430–4.
[6]
Swanson EB, Herrgesell MJ, Arnoldo M, Sippell DW, Wong RS. Microspore mutagenesis and selection: Canola plants with field tolerance to the imidazolinones. Theor Appl Genet. 1989;78(4):525-30.
[7]
Saxena PK, King J. Lack of cross-resistance of imidazolinone-resistant cell lines of Datura innoxia P. Mill. to chlorsulfuron : evidence for separable sites of action on the target enzyme. Plant Physiol. 1990;94(3):1111-5.
[8]
Haughn GW, Somerville CR. A mutation causing imidazolinone resistance maps to the csr1 locus of Arabidopsis thaliana. Plant Physiol. 1990;92(4):1081-5.
[9]
Mazur BJ, Falco SC. The development of herbicide resistant crops. Annu Rev Plant Physiol. 1989;40(1):441–70.
[10]
Lee KY, Townsend J, Tepperman J, Black M, Chui CF, Mazur B, Dunsmuir P, Bedbrook J. The molecular basis of sulfonylurea herbicide resistance in tobacco. EMBO J. 1988;7(5):1241-8.
[11]
Haughn GW, Smith J, Mazur B, Somerville C. Transformation with a mutant Arabidopsis acetolactate synthase gene renders tobacco resistant to sulfonylurea herbicides. Mol Gen Genet. 1988;211(2):266–71.
[12]
Koncz C, Schell J. The promoter of TL-DNA gene 5 controls the tissue-specific expression of chimaeric genes carried by a novel type of Agrobacterium binary vector. Mol Gen Genet. 1986;204(3):383–96.
[13]
Murashige T, Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant. 1962;15(3):473–97.
[14]
DNA cloning: a practical approach. Ed. DM Glover. Oxford, IRL Press, 1985; Vol. 1 and 2: 435 p
[15]
De Block M. Genotype-independent leaf disc transformation of potato (Solanum tuberosum) using Agrobacterium tumefaciens. Theor Appl Genet. 1988;76(5):767-74.
[16]
Murray MG, Thompson WF. Rapid isolation of high molecular weight plant DNA. Nucleic Acids Res. 1980;8(19):4321-5.
[18]
Feinberg AP, Vogelstein B. A technique for radiolabeling DNA restriction endonuclease fragments to high specific activity. Anal Biochem. 1983;132(1):6-13.
[19]
Kirk MM, Kirk DL. Translational regulation of protein synthesis, in response to light, at a critical stage of Volvox development. Cell. 1985;41(2):419-28.