Експресія генів Т-району у гібридах соматичних клітин, отриманих злиттям нормальної і пухлинної клітин

Каневський, І. Ф.; Череп, Н. Н.; Скаржинська, М. В.; Глеба, Ю. Ю.

doi:10.7124/bc.000018

Biopolym. Cell. 1985; 1(2):86-91.

http://dx.doi.org/10.7124/bc.000018

Клітинна біологія

Експресія генів Т-району у гібридах соматичних клітин, отриманих злиттям нормальної і пухлинної клітин

1Каневський І. Ф., 1Череп Н. Н., 1Скаржинська М. В., 1Глеба Ю. Ю.

Інститут ботаніки ім. М. Г. Холодного АН УРСР
Київ, СРСР

Abstract

У дослідах для злиття використовували протопласти, виділені з пухлинних клітин тютюну (B6S3) і мезофільних клітин листа беладони. На безгормональному середовищі отримано 57 гібридних клітинних ліній. Аналіз гібридів включав вивчення множинних молекулярних форм амілази, активності лізопіндегідрогенази, морфогенетичних реакцій, стійкості до 5-бромдезоксиуридину, 2-аміноетилцистеїну, 5-метилтриптофану і цитогенетичне дослідження. Для більшості ознак, що кодуються Т-ДНК у гібридних клітин, характерно домінантне успадкування. У ряді випадків експресія залежить від наявності/відсутності екзогенних фітогормонів у поживних середовищах.

Повний текст: (PDF, російською)

References

[1] White PR, Braun AC. A cancerous neoplasm of plants. Autonomous bacteria-free crown-gall tissue. Cancer Res. 1942; 2:597-617.

[2] Lioret C. Les acides amines libres des tissus de crown-gall cultives in vitro. Mise en evidence d'un acide amine particulier a ces tissus. C. R. Acad. Sci. Paris, 1957; 244:2171-2174.

[3] Menage A, Morel G. Sur la presence d'octopine dans les tissus de crown-gall. C. R. Acad. Sci. Paris. 1964; 259:4795-4796.

[4] Kemp JD. A new amino acid derivative present in crown gall tumor tissue. Biochem Biophys Res Commun. 1977;74(3):862-8.

[5] Wullems GJ, Molendijk L, Schilperoort RA. The expression of tumour markers in intraspecific somatic hybrids of normal and crown gall cells from Nicotiana tabacum. Theor Appl Genet. 1980;56(5):203-8.

[6] Kanevskiy IF, Gleba YUYU, Cherep NN. Obtaining and analysis of cell hybrids between Nicotiana plumbaginifolia and Nicotiana tabacum transformed with Agrobacterium tumafaciens. Genetika. 1983;19(12):2060-6.

[7] Linsmaier EM, Skoog F. Organic growth factor requirements of tobacco tissue cultures. Physiol Plantarum. 1965;18(1):100-127.

[8] Gleba YY, Hoffmann F. Hybrid cell lines Arabidopsis thaliana + Brassica campestris: No evidence for specific chromosome elimination. Mol Gen Genet., 1978; 165(3):257-64.

[9] Otten LA, Schilperoort RA. A rapid micro scale method for the detection of lysopine and nopaline dehydrogenase activities. Biochim Biophys Acta. 1978;527(2):497-500.

[10] Davis BJ. Disc electrophoresis. II. Method and application to human serum proteins. Ann N Y Acad Sci. 1964;121:404-27.

[11] Menczel L, Nagy F, Kiss ZR, Maliga P. Streptomycin resistant and sensitive somatic hybrids of Nicotiana tabacum + Nicotiana knightiana: correlation of resistance to N. tabacum plastids. Theor Appl Genet. 1981;59(3):191-5.

[12] Gleba YY, Momot VP, Cherep NN, Skarzynskaya MV. Intertribal hybrid cell lines of Atropa belladonna (X) Nicotiana chinensis obtained by cloning individual protoplast fusion products. Theor Appl Genet. 1982;62(1):75-9.

[13] Dahl GA, Tempe J. Studies on the use of toxic precursor analogs of opines to select transformed plant cells. Theor Appl Genet. 1983;66(3-4):233-9.

[14] Meitis F. 5-Bromodeoxyuridine: A specific inhibitor of cytokinin-habituation in tobacco cell culture. Planta. 1976;129(3):239-44.

[15] Vyskot B, Karpfel Z, Bezdek M. Hormonal control of 5-bromodeoxyuridine (BUdR) tolerance in crown-gall tumors and habituated tissues. Planta. 1977;137(3):247-52.