Biopolym. Cell. 2009; 25(6):509-512.
Короткі повідомлення
Експресія нікотинових ацетилхолінових рецепторів на клітинах В-лімфом людини
1Омельченко Д. М., 1Скок М. В.
  1. Інститут біохімії ім. О. В. Палладіна НАН України
    вул. Леонтовича, 9, Київ, Україна, 01601

Abstract

Мета. Визначити зв’язок між рівнем експресії нікотинових ацетилхолінових рецепторів (нАХР) і ступенем диференціації та активації В-лімфоцитів. Методи. Експресію нАХР на клітинних лініях REH, Ramos і Daudi вивчали методом протокової цитофлуориметрії з використанням антитіл, специфічних до різних субодиниць рецептора; проліферацію клітин оцінювали за допомогою МТТ-тесту. Результати. Показано, що рівень експресії α4β2/β4 та α7 нАХР підвищується по мірі диференціації (Ramos > REH) і активації В-лімфоцитів (Daudi > Ramos) та залежить від експресії антиген-специфічного рецептора. Стимуляція/блокування нАХР не впливає на інтенсивність проліферації досліджених клітин.
Keywords: нікотиновий ацетилхоліновий рецептор, В-лімфоцити

References

[1] Paterson D., Nordberg A. Neuronal nicotinic receptors in the human brain Prog. Neurobiol 2000 61, N 1:75–111.
[2] Conti-Fine B. M., Navaneetham D., Lei S., Maus A. D. Neuronal nicotinic receptors in non-neuronal cells: new mediators of tobacco toxicity? Eur. J. Pharmacol 2000 393, N 1–3:279–294.
[3] Grando S. A. Cholinergic control of epidermal cohesion in norm and pathology Exp. Dermatol 2006 15, N 4 P. 265–282.
[4] Kawashima K., Fujii T. Expression of non-neuronal acetylcholine in lymphocytes and its contribution to the regulation of immune function Front. Biosci 2004 9:2063– 2085.
[5] Wang H., Yu M., Ochani M., Amella C. A., Tanovic M., Susarla S., Li J. H., Yang H., Ulloa L., Al-Abed Y., Czura C. J., Tracey K. J. Nicotinic acetylcholine receptor alpha7 subunit is an essential regulator of inflammation Nature 2003 421, N 6921:384–388.
[6] Skok M., Grailhe R., Agenes F., Changeux J. P. The role of nicotinic acetylcholine receptors in lymphocyte development J. Neuroimmunol 2006 171, N 1–2:86–98.
[7] Skok M. V., Grailhe R., Agenes F., Changeux J. P. The role of nicotinic receptors in B-lymphocyte development and activation Life Sci 2007 80, N 24–25:2334–2336.
[8] Skok M. V., Kalashnik E. N., Koval L. N., Tsetlin V. I., Utkin Y. N., Changeux J. P., Grailhe R. Functional nicotinic acetylcholine receptors are expressed in B lymphocyte-derived cell lines Mol. Pharmacol 2003 64, N 4:885–889.
[9] Skok M. V., Voitenko L. P., Voitenko S. V., Lykhmus E. Y., Kalashnik E. N., Litvin T. I., Tzartos S. J., Skok V. I. Alpha subunit composition of nicotinic acetylcholine receptors in the rat autonomic ganglia neurons as determined with subunitspecific anti-alpha(181–192) peptide antibodies Neuroscience 1999 93, N 4:1427–1436.
[10] Koval O. M., Voitenko L. P., Skok M. V., Lykhmus E. Y., Tsetlin V. I., Zhmak M. N., Skok V. I. The b-subunit composition of nicotinic acetylcholine receptors in the neurons of the guinea pig inferior mesenteric ganglion Neurosci. Lett 2004 365, N 2:143–146.
[11] Carmichael J., DeGraff W. G., Gazdar A. F., Minna J. D., Mitchell J. B. Evaluation of a tetrazolium-based semiautomated colorimetric assay: assessment of radiosensitivity. Cancer Res. 1987; 47(4):943–946.
[12] Koval L. M., Lykhmus O. Yu., Omelchenko D. M., Komisarenko S. V., Skok M. V. The role of alpha7 nicotinic acetylcholine receptors in B lymphocyte activation Ukr. Biokhim. Zh. 2009; 81(4):5–11.
[13] Buerstedde J. M., Reynaud C. A., Humphries E. H., Olson W., Ewert D. L., Weill J. C. Light chain gene conversion continues at high rate in an ALV-induced cell line EMBO J 1990 9, N 3:921–927.
[14] Omelchenko D. M., Kalashnik O. M., Koval L. M., Komisarenko S. V., Skok M. V. Analysis of signaling pathways activated by nicotinic acetylcholine receptors in b-lymphocytederived cells. Ukr. Biokhim. Zh. 2009; 81(1):59–66.