Biopolym. Cell. 2003; 19(6):553-557.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.000683
Біоорганічна хімія
Застосування ферментного сенсора на основі рН-чутливих польових транзисторів для визначення концентрації глюкози у картопляному соку
1Скришевська І. В., 1Корпан Я. І., 1Солдаткін О. П.
  1. Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
    Вул. Академіка Заболотного, 150, Київ, Україна, 03680

Abstract

Метод моніторингу якості картоплі, запропонований в даній роботі, полягає у визначенні концентрації глюкози в карто­пляному соку за допомогою біосенсора на основі рН-чутливих польових транзисторів та іммобілізованої глюкозооксидази. Концентрацію глюкози в соку картоплі оцінювали за методом стандартних добавок, використовуючи лінійну область калі­брувальної кривої у діапазоні концентрацій глюкози від 0,2 до 2 мМ. Точність оцінки перевіряли, порівнюючи сенсорний метод з колориметричним визначенням глюкози за допомогою ферментного набору «Діаглюк» (Україна). Між отриманими даними спостерігалася добра кореляція.
Повний текст: (PDF, російською)

References

[1] Pritchard M. Relationships of sugars to color of processed potatoes. Potato Facts Bull.-New York: Manitoba Agricult. and Food, publ., 1993: 4.
[2] Tai G, Xiong XY. Selection for low glucose content in potato breeding populations. Northeast Potato Technology Forum materials. Seabrook, 2001: 118.
[3] Sowokinos J. Choices for potatoes that chip directly from 42 F without reconditioning. Valley Potato Grower. 1999. 64, N 114: 14-17.
[4] Wu G. Disease resistance conferred by expression of a gene encoding H2O2-Generating glucose oxidase in transgenic potato plants. The Plant Cell. 1995;7(9):1357–68.
[5] Pat USA 5, 959, 180. DNA sequences from potato encoding solanidine UDP-glucose glucosyltransferase and use to reduce glycoalkaloids in solanaceous plants. Moehs C. P., Allen P., Rockhold E., Stapleton A., Friedman M., Belknap W.. Publ. 1999.
[6] Soldatkin AP, El’skaya AV, Shul’ga AA, Netchiporouk LI, Nyamsi Hendji AM, Jaffrezic-Renault N, et al. Glucose-sensitive field-effect transistor with additional Nafion membrane. Anal Chim Acta. 1993;283(2):695–701.
[7] Volotovsky VV, Patskovsky SV. Device for measuring of gate potential of ion-sensitive field effect transistor. Devices Exp. Tech. 1996; 3: 168.
[8] Soldatkin AP, Boubryak OA, Starodub NF, El’skaya AV, Sandrovsky AK, Shul’ga AA, Strikha VI. Urease biosensor based on field effect transistor. Design features and performance in a model conditions. Electrochemistry (Moskow). 1993; 29(3):315-9.
[9] Dzyadevich SV, Korpan YI, Arkhipova VN, Alesina MYu, Martelet C, El'Skaya AV, Soldatkin AP. Application of enzyme field-effect transistors for determination of glucose concentrations in blood serum. Biosens Bioelectron. 1999;14(3):283-7.
[10] Kim D, Goldberg I, Judy J. A micromashined amperometric nitrate sensor. Proc. Annu. Res. Rev. of UCLA Electrical Engineering Department. Los-Angeles, 2003: 19-25.
[11] Tretyakov NN, Koshkin EI, Makrushin NM. Physiology and biochemistry of agricultural plants. M.: Kolos, 2000; 640 p.
[12] Przybyt M. Influence of anions on glucose electrode response: application to extending concentration range. Biosens Bioelectron. 1998;13(3-4):471-7.