Biopolym. Cell. 2000; 16(1):60-63.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.000557
Віруси та клітина
Вивчення циклів репродукції та динаміки накопичення вірусу класичної чуми свиней в культурі клітин РК-15 за допомогою методу флюоресцентних зондів
1Решетняк Л. Д., 1Краснобаев Є. О., 1Новожилова Є. В., 1Жеребцова Е. М., 1Попова Г. А.
  1. Інститут ветеринарної медицини НААН України
    Вул. Донецька, 30, Київ, Україна, 03151

Abstract

Розроблено важливу для вирішення біотехнологічних проблем методологію вивчення циклів розмноження та динаміки накопичення вірусу класичної чуми свиней в культурі перевивних клітин РК-15 за умов відсутності будь-яких проявів цитопатогенної дії вірусу. Підтверджено можливість широко викори­стання з цією метою перспективного та надійного методу флюоресцентных зондів, що не потребує попередньої адаптації інфекційного чинника до чутливої культури та подальшого його розмноження в чутливих клітинах.
Повний текст: (PDF, англійською)

References

[1] Danner K, Bachmann PA. Multiplication and spread of hog cholera virus, Strain Munich-1, in PK-15 cell cultures. Zentralbl Veterinarmed B. 1970;17(3):353-62.
[2] Siurin VN, Bietousova RV, Fomina NV. Classical swine fever. Diagnostics of animal viral diseases (a Reference book). Moscow: Agropromizdat, 1991: 352-87 .
[3] Vitin VG, Tchermashentsev VL, Rudobetski TV, Leontieva NA, Shevchenko LV, Tchermantseva NA. The effect of different cultivation conditions on the accumulation of the vaccine classical swine fever virus in a cell culture. Probl. Veterinary Virol, Microbiol, and Epizootol.: Abstr. Conf. All-Russian Res. Inst. Veterinary Virol. Microbiol. Pokrov, 1992: 121-2.
[4] Novozhiliva EV. Express indication and identification of some animal viruses and antiviral antibodies. Veterynarna medytsyna Ukrayiny. 1997;4: 36-8.
[5] Mishchenko VA, Dudnikov AI, Zakharov VM, Novozhilova EV, Bazarov MA, Prokhoriatova EV, Smirnov AB, Babkin VF, Belokon' VS, Kul'bit RI, et al. Use of fluorescent probes for identifying certain animal viruses and antibodies to them. Vopr Virusol. 1995;40(1):12-4.
[6] Novozhilova EV, Krasnobayev EA, Grishok LP, Popova GA. Express indication and identification of the classical swine fever virus by a fluorescent probe using the PK-15 cell suspension. Abstr. Int. Res. Conf. Classical swine fever: Actual problems and practical approaches* (9-14 November 1994). Pokrov, 1995: 58.
[7] Novozhilova EV, Krasnobayev EA, Grishok LP. Evaluation of possible use of fluorescent probes and fluorescent antibody techniques for the indication and identification of the classical swine fever virus. Abstr. All-Russian Sci. Pract. Conf. «Viral diseases of domestic animals (Vladimir, April, 1995). Vladimir, 1995: 43.
[8] Novozhilova EV, Krasnobayev EA. Express indication and identification of the classical swine fever virus (CSFV) using a fluorescent probes technique and a modified neutralization reaction. Veterynarna medytsyna Ukrayiny. 1997; 11: 37-40.
[9] Igudin LI, Markman GA, Loban' SA, Pozina IM, Migunov VN. Polyethylene glycols and their use in biology and medicine. Zh Mikrobiol Epidemiol Immunobiol. 1984;(4):17-21.
[10] Reshetniak LD. The effect of bovine serum purification on the classical swine fever virus accumulation in a permissive swine cell line, PK-15. Laboratorna Diagnostika. 2000; 1: 3-5.
[11] Van Oirschot J. T. Classical swine fever virus. Diseases of Swine. Ames, 1986.
[12] 12. Buonavoglia C, Falcone E, Pestalozza S, Iovane G, Rivero VB. Susceptibility of a minipig kidney cell line (MPK) to hog cholera virus. Microbiologica. 1988;11(3):263-4.
[13] Classical swine fever. OIE Manual of standards for diagnos­tic tests and vaccines. Paris, 1996. 3rd ed: 145-154.