Аглютинація тимоцитів щурів, викликана агрегованим конканаваліном А
DOI:
https://doi.org/10.7124/bc.0000FBАнотація
С использованием метода светопропускания исследовали влияние преципитирующих в присутствии конканавалина А (КонА) НАДН, пероксидазы и каталазы на КонА-индуцированную агглютинацию тимоцитов крыс. Установлено, что агрегированный КонА вызывает значительное ускорение реакции агглютинации в сравнении с нативным КонА. Скорость агглютинации тимоцитов зависит от размеров агрегатов молекул КонА. Полученные результаты свидетельствуют о ключевой роли кластеризации мембранных рецепторов в обеспечении КонА-индуцированной агглютинации клетокПосилання
Frants Kh. Lectins: properties, functions, and possible applications. Zh Mikrobiol Epidemiol Immunobiol. 1980;(1):3-10.
Metakovskii EV. Mechanism of intercellular contacts and the change in cell membranes during differentiation. Mol Biol (Mosk). 1981;15(4):753-67.
Alberts B, Bray D, Lewis J, Raff M, Roberts K, Watson JD. Molecular biology of the cell. New York and London, Garland Publishing, Inc., 1983.
Zengbush P. Molecular and Cellular biology. Moscow, Mir, 1982; Vol. 3:320 p.
Mastromarino P, Neri G, Serra A, Walborg EF Jr. Role of cell surface receptor mobility in concanavalin A-induced agglutination of Novikoff hepatoma and normal rat liver cells. J Cell Sci. 1980;42:169-82.
Roth J. The lectins: molecular probes in cell biology and membrane research. Exp Phathol. 1978. Suppl. 3:1-686.
Timoshenko AV, Cherenkevich SN. Regulation by concanavalin A state redox systems of the thymocytes plasma membrane. Tsitologiya. 1987; 29(9):1107.
Capo C, Garrouste F, Benoliel AM, Bongrand P, Ryter A, Bell GI. Concanavalin-A-mediated thymocyte agglutination: a model for a quantitative study of cell adhesion. J Cell Sci. 1982;56:21-48.
Loor F. Lectin-induced lymphocyte agglutination. An active cellular process? Exp Cell Res. 1973;82(2):417-25.
Pfeifer RW, Patterson RM. Modulation of lectin-stimulated lymphocyte agglutination and mitogenesis by estrogen metabolites: effects on early events of lymphocyte activation. Arch Toxicol. 1986;58(3):157–64.
Timoshenko AV, Cherenkevich SN, Samal' AB. Role of reactive oxygen sPecies in a concanavalin A-induced lymPhocyte agglutination. Vestn. Belarusian university. Ser. 2. 1986; (3):47-50.
Rule GS, Kruuv J, Lepock JR. Membrane lipid fluidity as rate limiting in the concanavalin A-mediated agglutination of pyBHK cells. Biochim Biophys Acta. 1979;556(3):399-407.
Singer JA, Morrison M. Effect of adenosine on concanavalin A agglutination of human erythrocytes. Biochim Biophys Acta. 1980;598(1):40-50.
Ng MH, Ng WS. Concanavalin A receptor capping and blastogenesis in human lymphocytes: inhibition by egg lecithin. Cytobios. 1981;32(125):39-46.
