Ультраструктурна організація хроматину, що реплікується в передчасно конденсованих хромосомах
DOI:
https://doi.org/10.7124/bc.0008E8Ключові слова:
хроматин, реплікація, передчасно конденсовані хромосоми (ПКХ), ультраструктураАнотація
Мета. До цих пір немає єдиної думки про ультраструктурі реплицирующихся хроматину. Ми проаналізували ультраструктурну організацію Реплікаційний фокуса в клітках з передчасно конденсованими хромосомами (ПКХ). Методи. Для вивчення хроматину на ультраструктурному рівні використовували методи кореляційної електронної та світлової мікроскопії, а також іммуноголдінг. Результати. Було показано, що реплікація в ПКХ відбувається в проміжках між доменами конденсованого хроматину. C допомогою кореляційної мікроскопії було встановлено, що в Реплікаційний фокусах присутній деконденсірованний хроматин і глобули діаметром 80 і 130 нм, так само присутні в конденсованих нерепліцірующіхся хроматінових доменах. Більш того, за допомогою іммуноголдінга було показано, що реплікація ДНК в S-фазних ПКХ відбувається в пухкому хроматині на периферії щільних хроматінових доменів. Висновки. Реплікація в ПКХ відбувається в деконденсірованном хроматині сусідить з конденсованим хроматином без утворення спеціальних структур.Посилання
Nakamura H, Morita T, Sato C. Structural organizations of replicon domains during DNA synthetic phase in the mammalian nucleus. Exp Cell Res. 1986;165(2):291-7.
Natsume T, Tanaka TU. Spatial regulation and organization of DNA replication within the nucleus. Chromosome Res. 2010;18(1):7-17.
Hozák P, Hassan AB, Jackson DA, Cook PR. Visualization of replication factories attached to nucleoskeleton. Cell. 1993;73(2):361-73.
Hozák P, Jackson DA, Cook PR. Replication factories and nuclear bodies: the ultrastructural characterization of replication sites during the cell cycle. J Cell Sci. 1994;107 ( Pt 8):2191-202.
Philimonenko AA, Hodný Z, Jackson DA, Hozák P. The microarchitecture of DNA replication domains. Histochem Cell Biol. 2006;125(1-2):103-17.
Jaunin F, Fakan S. DNA replication and nuclear architecture. J Cell Biochem. 2002;85(1):1-9.
Liu DF, el-Alfy M, Leblond CP. DNA changes involved in the formation of metaphase chromosomes, as observed in mouse duodenal crypt cells stained by osmium-ammine. II. Tracing nascent DNA by bromodeoxyuridine into structures arising during the S phase. Anat Rec. 1995;242(4):449-61.
Jaunin F, Visser AE, Cmarko D, Aten JA, Fakan S. A new immunocytochemical technique for ultrastructural analysis of DNA replication in proliferating cells after application of two halogenated deoxyuridines. J Histochem Cytochem. 1998;46(10):1203-9.
Jaunin F, Visser AE, Cmarko D, Aten JA, Fakan S. Fine structural in situ analysis of nascent DNA movement following DNA replication. Exp Cell Res. 2000;260(2):313-23.
Johnson RT, Rao PN. Mammalian cell fusion: induction of premature chromosome condensation in interphase nuclei. Nature. 1970;226(5247):717-22.
Hanks SK, Rao PN. Initiation of DNA synthesis in the prematurely condensed chromosomes of G1 cells. J Cell Biol. 1980;87(1):285-91.
Hanks SK, Gollin SM, Rao PN, Wray W, Hittelman WN. Cell cycle-specific changes in the ultrastructural organization of prematurely condensed chromosomes. Chromosoma. 1983;88(5):333-42.
Hameister H, Sperling K. Description of a chromosome replication unit in individual prematurely condensed human S-phase chromosomes. Chromosoma. 1984;90(5):389-93.
Danscher G. Localization of gold in biological tissue. A photochemical method for light and electronmicroscopy. Histochemistry. 1981;71(1):81-8.
Gotoh E. Visualizing the dynamics of chromosome structure formation coupled with DNA replication. Chromosoma. 2007;116(5):453-62.
Zatsepina OV, Polyakov VY, Chentsov YS. Chromonema and chromomere. Chromosoma. 1983;88(2):91–7.
Zhironkina OA, Kurchashova SY, Brattseva AL, Cherepaninets VD, Strelkova OS, Belmont AS, Kireev II. Overcoming steric hindrances during replication of peripheral heterochromatin. Cell Tissue Biol. 2015;9(2):110–8
