Активність ксантиноксидази регулює ріст клітин мозку ембріона людини
DOI:
https://doi.org/10.7124/bc.000121Ключові слова:
ксантиноксидаза, ембріональні клітини мозку людини, проліферація, клітинна смертьАнотація
Мета. Важливість функціонування ксантиноксидази (КО) в процесах проліферацї і диференціації клітин доведено багатьма вченими. Ми припустили, що КО виконує незамінну роль у процесах розвитку, дозрівання, а також загибелі клітин мозку ембріона людини. Методи. Абортивний матеріал людини застосовано для культивування клітин (E90). Активність КО визначали за кількістю сечової кислоти в тканині; клітинну смерть – з використанням трипанового синього. Результати. Алопуринол, згідно із нашим дослідженням, пригнічує активність КО (0,12 ± 0,02; 0,20 ± ± 0,03 відповідно, p 0,05). На 12-й день кількість клітин у культурі, у яку вносили алопуринол, починаючи з перших етапів розвитку, була вищою, ніж у контролі (2350,1 ± 199,0 vs 2123 ± 96), та перевищувала кількість клітин у культурі, до якої додавали алопуринол на більш пізніх стадіях росту і розвитку (1479,6 ± 103,8, p < 0,05). В усіх культурах кількість мертвих клітин виявилася нижчою порівняно з контролем, що вказує на захисні властивості алопуринолу як інгібітора КО. Висновки. Алопуринол ініціює клітинну проліферацію на ранніх етапах розвитку клітинної куль тури та пригнічує клітинний ріст на пізніших стадіях.Посилання
Blaschke A. J., Staley K., Chun J. Widespread programmed cell death in proliferative and postmitotic regions of the fetal cerebral cortex Development 1996 122, N 4 P. 1165–1174.
Hughes W. F., McLoon S. C. Ganglion cell death during normal retinal development in the chick: comparisons with cell death induced by early target field destruction Exp. Neurol 1979 66, N 3 P. 587–601.
Clarke P. G., Rogers L. A., Cowan W. M. The time of origin and the pattern of survival of neurons in the isthmo-optic nucleus of the chick J. Comp. Neurol 1976 167, N 2 P. 125–142.
Moriwaki Y., Yamamoto T., Higashino K. Enzymes involved in purine metabolism – a review of histochemical localization and functional implications Histol. Histopathol 1999 14, N 4 P. 1321–1340.
Khalil Z., Khodr B. A role for free radicals and nitric oxide in delayed recovery in aged rats with chronic constriction nerve injury Free Radic. Biol. Med 2001 31, N 4 P. 430–439.
Tennant J. R. Evaluation of the trypan blue technique for determination of cell viability Transplantation 1964 2 P. 685–694.
Rahman A., Katzive L., Henshaw S. K. A Global review of laws on induced abortion, 1985–1997 Int. Fam. Plann. Persp 1998 24, N 2 P. 56–64.
Mattson M. P., Rychlik B. Cell culture of cryopreserved human fetal cerebral cortical and hippocampal neurons: neuronal development and responses to trophic factors Brain Res 1990 522, N 2 P. 204–214.
Litwack G., Bothwell J. W., Williams J. N. Jr., Elvehjem C. A. A colorimetric assay for xanthine oxidase in rat liver homogenates J. Biol. Chem 1953 200, N 1 P. 303–310.
Kruger N. J. The Bradford method for protein quantitation Methods Mol. Biol 1994 32 P. 9–15.
Fatokun A. A., Stone T. W., Smith R. A. Hydrogen peroxide mediates damage by xanthine and xanthine oxidase in cerebellar granule neuronal cultures Neurosci. Lett 2007 416, N 1 P. 34–38.
