Субклітинна локалізація і активність фосфорилази у паренхімних клітинах міні-бульб Solarium tuberosum L. при клиностатуванні
DOI:
https://doi.org/10.7124/bc.0006CFАнотація
Досліджували субклітинну локалізацію і активність фосфорилази (КФ 2.4.1.1) у міні-бульбах S. tuberosum L. (сорт Адрета). Міні-бульби формували за умов стаціонарного контролю та при дії клиностатування, яке імітувало мікрогравітацію. В експериментах використано метод стерильної культури міні-рослин, електронно-цитохімічний метод виявлення локалізації фосфорилази, а також біохімічні методи для визначення вмісту вуглеводів, активності фосфорилази та її ізоферментного складу. Встановлено, що клиностатування не впливає на субклітинну локалізацію фосфорилази і електрофоретичну рухливість її ізоформ, але спричинює підвищення активності фосфорилази та вмісту крохмалю в запасних органах картоплі.Посилання
Kordyum EL. Biology of plant cells in microgravity and under clinostating. Int Rev Cytol. 1997; 171:1-78.
Sytnik KM, Kordyum YeL, Nedukha OM, Fomicheva VM. Plant cell when the geophysical factors. Kiev, Naukova Dumka, 1984; 134 p.
Kuznetsov O, Brown C, Levine H, Sanwo M, Hasensteinn K. Space-grown plants show modified starch structure: Abstr. of 33rd COSPAR 2000 (Warsaw, 16-28 July). Warsaw, 2000; 631 p.
Nedukha EM. Effects of microgravity on the structure function of plant cell walls. Int Rev Cytol. 1997; 170:39-77.
Jiao S, Hilaire E, Paulsen AQ, Guikema JA. Ultrastructural observation of altered chloroplast morphology in space-grown Brassica rapa cotyledons. J Gravit Physiol. 1999; 6 (1):93-4.
Popova AF, Kordyum EL, Shnyukova EI, Sytnik KM. Plastid ultrastructure, fractional composition and activity of amylases in Chlorella cells in microgravity. J Gravit Physiol. 1995; 2 (1):159-60.
Smith AM, Denyer K, Martin C. The synthesis of the starch granule. Annu Rev Plant Biol. 1997; 48:67-87.
Steup M, Peavey DG, Gibbs M. The regulation of starch metabolism by inorganic phosphate. Biochem Biophys Res Commun. 1976; 72 (4):1554-61.
Heldt HW, Chon CJ, Maronde D. Role of orthophosphate and other factors in the regulation of starch formation in leaves and isolated chloroplasts. Plant Physiol. 1977;59(6):1146-55.
Watson KA, McCleverty C, Geremia S, Cottaz S, Driguez H, Johnson LN. Phosphorylase recognition and phosphorolysis of its oligosaccharide substrate: Answers to a long outstanding question. EMBO J. 1999; 18 (17):4619-32.
Croxdale J, Cook M, Tibbitts TW, Brown CS, Wheeler RM. Structure of potato tubers formed during spaceflight. J Exp Bot. 1997; 48 (317):2037-43.
Murashige T, Skoog FA. A revised medium of rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiol Plantar. 1962; 15 (3):473-97.
Nedukha EM. Location of phosphorylase activity in protonema cells of Funaria hygrometrica Hedw. Tsitiligiia. 1977; 19(9): 1062-1064.
Yermakov AI, Arasimovich VV, Yarosh YaYa, Peruanskiy YuV, Lukovnikov GA, Ikonnikova MI. Methods biochemical study of plants. Ed. AI Ermakov. Leningrad, Agropromizd. 1987; 430 p.
Rodionova V, Kholoptseva M. Determination of phospholipids leaves dimensional thin-layer chromatography silica gel. Plant Physiol. 1974; 6(2):201-204.
Gerbrandy SjJ, Verleur JD. Phosphorylase isoenzymes: Localization and occurrence in different plant organs in relation to starch metabolism. Phytochemistry. 1971; 10 (2):261-6.
Bolotova VTs, Sakanen YeI, Lesiovskaya YeYe, Pastushenkov LV. Spectrophotometric method for determination of polysaccharides in the leaves of Tilia cordata. Plant Resources. 2001; 37(3):109-112.
Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr AL, Randall RJ. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J Biol Chem. 1951; 193 (1):265-75.
Perbal G, Driss-Ecole D, Rutin J, Salle G. Graviperception of lentil seedling roots grown in space (Spacelab D1 Mission). Physiol Plantar. 1987; 70: 119-26.
Geigenberger P, Hajirezaei M, Geiger M, Deiting U, Sonnewald U, Stitt M. Overexpression of pyrophosphatase leads to increased sucrose degradation and starch synthesis, increased activities of enzymes for sucrose-starch interconversions, and increased levels of nucleotides in growing potato tubers. Planta. 1998; 205 (3):428-37.
Xu X, Van Lammeren AAM, Vermeer E, Vreugdenhil D. The role of gibberellin, abscisic acid, and sucrose in the regulation of potato tuber formation in vitro. Plant Physiol. 1998; 117 (2):575-84.
Vreugdenhil D, Struik P. An integrated view of the hormonal regulation of tuber formation in piotato (Solanum tuberosum). Physiol. Plantar. 1989; 75: 525-31.
Albrecht T, Koch A, Lode A, Greve B, Schneider-Mergener J, Steup M. Plastidic (Pho1-type) phosphorylase isoforms in potato (Solanum tuberosum L.) plants: Expression analysis and immunochemical characterization. Planta. 2001; 213 (4):602-13.
Kursanov AL. Transport of assimilates in the plant. Moscow, Nauka. 1976; 646 p.
