Застосування карбоціанінових флуоресцентних зондів для оцінки функціонального стану культивованих клітин після кріоконсервування

Автор(и)

  • О. І. Гончарук Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України 23, Переяслівська вул., Харків, Україна, 61015 Автор
  • О. В. Онищенко Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України 23, Переяслівська вул., Харків, Україна, 61015 Автор
  • В. В. Тімон Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України 23, Переяслівська вул., Харків, Україна, 61015 Автор
  • Т. П. Петренко Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України 23, Переяслівська вул., Харків, Україна, 61015 Автор
  • І. А. Боровий Державна наукова установа «Інститут монокристалів» НАН України Леніна просп., 60, Харків, Україна, 61001 Автор
  • Ю. В. Малюкін Державна наукова установа «Інститут монокристалів» НАН України Леніна просп., 60, Харків, Україна, 61001 Автор
  • В. І. Грищенко Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України 23, Переяслівська вул., Харків, Україна, 61015 Автор

DOI:

https://doi.org/10.7124/bc.0007A4

Ключові слова:

флуоресценція, зонди, фібробласти людини, культура клітин, кріоконсервування

Анотація

Досліджено можливість застосування карбоціанінових флуоресцентних зондів С2, С9 і JC-1 для характеристики кріоконсервованих клітин диплоїдної лінії фібробластів людини. Показано, що ці флуоресцентні зонди можуть бути використані при кріоконсервуванні клітинних ліній для моніторінгу їхнього функціонального стану.

Посилання

Belous AM Grishchenko VI. Cryobiology. K.: Naukova Dumka, 1994. 430.

Tsutsaeva AA Agranenko VA Fedorova LI et al. Cryopreservation of cell suspensions. Under total. Ed. AA Tsutsaevoy. K.: Naukova Dumka, 1983. 240.

Dobretsov GE. Fluorescent probes in the study of cell membranes and lipoproteins. Moscow: Nauka, 1989. 277 p.

Lakowicz J. R. Principles of Fluorescence Spectroscopy. New York etc.: Kluwer Acad./Plenum Publ., 1999. 698 p.

Chentsov YU. S. Chondrules - set the cell mitochondria. Sorosovs. obrazovat. zhurn. 1997. 12:10–16.

Mashimo K, Ohno Y. Ethanol hyperpolarizes mitochondrial membrane potential and increases mitochondrial fraction in cultured mouse myocardial cells. Arch Toxicol. 2006;80(7):421-8.

De Rossi U., Moll J., Spieles M., Bach G., Dahne S., Kriwanek J., Lisk M. Control of the J-aggregation by variation of the N-alkyl-substituents. J. Prakt. Chem. 1995. 337(1):203–208.

Adams R. Methods of cell culture for biochemists. New York: Wiley, 1983. 264.

Culture of animal cells. Methods. Eds. R. Freshney. New York: Wiley, 1989. 333.

Smiley ST, Reers M, Mottola-Hartshorn C, Lin M, Chen A, Smith TW, Steele GD Jr, Chen LB. Intracellular heterogeneity in mitochondrial membrane potentials revealed by a J-aggregate-forming lipophilic cation JC-1. Proc Natl Acad Sci U S A. 1991;88(9):3671-5.

Salvioli S, Ardizzoni A, Franceschi C, Cossarizza A. JC-1, but not DiOC6(3) or rhodamine 123, is a reliable fluorescent probe to assess delta psi changes in intact cells: implications for studies on mitochondrial functionality during apoptosis. FEBS Lett. 1997;411(1):77-82.

Chekurova N. R., Kislov A. N., Venrintsev B. N. Effect of cryoprotectants on the electrical characteristics of the cell membrane of mouse embryos. Kriobiologiya. 1990. 1:25–29.

Markarian ShA, Bagramian KA, Arakelian VB. Membrane potential before and after deep freezing of Escherichia coli in the presence of dimethyl sulfoxide and diethyl sulfoxide. Biofizika. 2002;47(2):315-7.

Dmitrieva EV, Moshkov DA, Gakhova EN. Ultrastructural changes in the MP3 neuron of the mollusk Lymnaea stagnalis after cryopreservation of the isolated brain. Tsitologiia. 2006;48(6):480-5.

Завантаження

Опубліковано

2008-05-20

Номер

Розділ

Клітинна біологія