Виявлення і дослідження субгеномної РНК Х-вірусу картоплі

Автор(и)

  • Д. П. Грама Інститут мікробіології і вірусології ім. Д. К. Заболотного АН УРСР Київ, СРСР Автор
  • Н. Н. Машковський Інститут молекулярної біології і генетики АН УСРС Київ, СРСР Автор

DOI:

https://doi.org/10.7124/bc.0001CC

Анотація

В інфікованих Х-вірусом картоплі (ХВК) рослинах дурману виявлено вірусоспецифічну, низькомолекулярну РНК (0,3·106), яка гибрідизується з кДНК, синтезованою на РНК ХВК. Вона виявляється в інфікованих рослинах на третій день після зараження, седиментує в лінійному градієнті сахарози в основному між 18S і 5S рибосомними РНК, має послідовність нуклеотидів, що відповідає 3'-кінцю геномної РНК, і транслюється у безклітинній білоксинтезувальній системі в білок з ідентичною білку оболонки ХВК електрофоретичною рухливістю, тобто є субгеномною РНК ХВК для синтезу вірусного білка оболонки.

Посилання

Wodnar-Filipowicz A, Skrzeczkowski LJ, Filipowicz W. Translation of potato virus X RNA into high molecular weight proteins. FEBS Lett. 1980;109(1):151-5.

Pelham HR. Leaky UAG termination codon in tobacco mosaic virus RNA. Nature. 1978;272(5652):469-71.

Benicourt C, Haenni AL. Differential translation of turnip yellow mosaic virus mRNAs in vitro. Biochem Biophys Res Commun. 1978;84(4):831-9.

Morozov SYu, Zakharyev VM, Chernov BK, Prasolov VS, Kozlov YuV, Skryabin KG, Atabekov IG. Analysis of primary structure and localization of the coat protein gene in genomic RNA of potato X virus. Dokl Akad Nauk SSSR. 1983; 271(1):211-5.

Krayev VG, Didenko LF, Maksimenko IA, Tromse LN. Research related to mRNP polysomes isolated from leaves of Datura, it is time-conjugated potato virus X. Bacteriophages. Pushchino, 1982; 161-7.

Krayev VG, Didenko LF, Parkhomenko NI. Investigation of mRNA and proteins comprising the cytoplasmic polysomes mRNP leaves Datura stramonium, infected potato X virus. 16th Conf. Febo: Proc. of reports. Moscow, 1984; 233.

Palukaitis P, Rakowski AG, Alexander DM, Symons RH. Rapid indexing of the sunblotch disease of avocados using a complementary DNA probe to avocado sunblotch viroid. Ann Appl Biol. 1981; 98(2):439-49.

Grama DP. Using short agarose preparative columns for purification of the rod-shaped and filamentous plant viruses. Mikrobiol Zh. 1982; 44(1):78-82.

Fraenkel-Conrat H, Singer B, Tsugita A. Purification of viral RNA by means of bentonite. Virology. 1961;14:54-8.

Garnier M, Mamoun R, Bove JM. TYMV RNA replication in vivo: replicative intermediate is mainly single stranded. Virology. 1980;104(2):357-74.

Zolotukhin SB, Ishchenko ID, Staverskaia OV, Ryndich AV, Kavsan VM. Synthesis and cloning of DNA, complementary to rabbit globin pre-mRNA. Mol Biol (Mosk). 1982;16(1):47-54.

Lehrach H, Diamond D, Wozney JM, Boedtker H. RNA molecular weight determinations by gel electrophoresis under denaturing conditions, a critical reexamination. Biochemistry. 1977;16(21):4743-51.

Seed B. Diazotizable arylamine cellulose papers for the coupling and hybridization of nucleic acids. Nucleic Acids Res. 1982;10(5):1799-810.

Maniatis T., Fritsch E. F., Sambrook J. Molecular cloning. New York: Cold Spring Harbor Lab., 1982. 545 p.

Roberts BE, Paterson BM. Efficient translation of tobacco mosaic virus RNA and rabbit globin 9S RNA in a cell-free system from commercial wheat germ. Proc Natl Acad Sci U S A. 1973;70(8):2330-4.

Johnston FB, Stern H. Mass isolation of viable wheat embryos. Nature. 1957;179(4551):160-1.

Ricciardi RP, Goodman RM, Gottlieb D. Translation of PVX RNA in vitro by wheat germ. I. Characterization of the reaction and product size. Virology. 1978;85(1):310-4.

Bruening G, Beachy RN, Scalla R, Zaitlin M. In vitro and in vivo translation of the ribonucleic acids of a cowpea strain of tobacco mosaic virus. Virology. 1976;71(2):498-517.

Laemmli UK. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 1970;227(5259):680-5.

Bonner WM, Laskey RA. A film detection method for tritium-labelled proteins and nucleic acids in polyacrylamide gels. Eur J Biochem. 1974;46(1):83-8.

Palukaitis P, García-Arenal F, Sulzinski MA, Zaitlin M. Replication of tobacco mosaic virus. VII. Further characterization of single- and double-stranded virus-related RNAs from TMV-infected plants. Virology. 1983;131(2):533-45.

Otal T, Hari V. Detection and cell-free translation of subgenomic RNAs of tobacco etch virus. Virology. 1983;125(1):118-26.

Dougherty WG. Analysis of viral RNA isolated from tobacco leaf tissue infected with tobacco etch virus. Virology. 1983;131(2):473-81.

Grama DP, Mashkovsky NN, Melnik AI, Kushnirenko OA. The presence of poly(A) sequence in RNA of potato virus X. Mikrobiol Zh. 1986; 48(1):82-90.

Hunter TR, Hunt T, Knowland J, Zimmern D. Messenger RNA for the coat protein of tobacco mosaic virus. Nature. 1976;260(5554):759-64.

Siegel A, Hari V, Montgomery I, Kolacz K. A messenger RNA for capsid protein isolated from tobacco mosaic virus-infected tissue. Virology. 1976;73(2):363-71.

Klein C, Fritsch C, Briand JP, Richards KE, Jonard G, Hirth L. Physical and functional heterogeneity in TYMV RNA: evidence for the existence of an independent messenger coding for coat protein. Nucleic Acids Res. 1976;3(11):3043-61.

Watanabe Y, Emori Y, Ooshika I, Meshi T, Ohno T, Okada Y. Synthesis of TMV-specific RNAs and proteins at the early stage of infection in tobacco protoplasts: transient expression of the 30K protein and its mRNA. Virology. 1984;133(1):18-24.

Завантаження

Опубліковано

1986-11-20

Номер

Розділ

Віруси та клітина