Афінна хроматографія глікобіополімерів чутливих і надчутливих рослин тютюну, уражених вірусом тютюнової мозаїки
DOI:
https://doi.org/10.7124/bc.0006E6Ключові слова:
вірус тютюнової мозаїки, надчутлива реакція, глікобіополімери, лектини, афінна хроматографіяАнотація
Методом афінної хроматографії в рослинах надчутливого сорту тютюну Імунний 580, уражених вірусом тютюнової мозаїки (ВТМ), через 1 добу після інокуляції виявлено позаклітинні вуглеводвмісний біополімери, відсутні у здорових рослинах. Подібні біополімери не виявляються в тканинах інфікованого ВТМ чутливого мутанта цього сорту. Оскільки ці біополімери в процесі афінної хроматографії здатні специфічно зв'язуватися з конканаваліном А, але не з аглютиніном зародків пшениці, в їхньому складі вуглеводними компонентами можуть слугувати маноза та/або глюкоза. Обговорюється можлива функціональна роль виявлених біополімерів в ініціації у рослин вірусіндукованої надчутливої реакції.Посилання
Sela I. Plant-virus interactions related to resistance and localization of viral infections. Adv Virus Res. 1981;26:201-37.
Loebenstein G, Gera A. The local lesion response to viruses: possibilities for engineering resistant plants. Biotechnology in Plant Disease Control. Lissabon: Wiley, 1993: 105-13.
Wieringa-Brants DH, Dekker WC. Induced Resistance in Hypersensitive Tobacco Against Tobacco Mosaic Virus by Injection of Intercellular Fluid from Tobacco Plants with Systemic Acquired Resistance. J Phytopathol. 1987;118(2):165–70.
Gianinazzi S. Antiviral agents and inducers of virus resistance: analogies with interferon. Active Defence Mechanisms in Plants. Ed. R. K. S. Wood. New York; London: Plenum Press, 1982: 275-98.
Whitham S, Dinesh-Kumar SP, Choi D, Hehl R, Corr C, Baker B. The product of the tobacco mosaic virus resistance gene N: similarity to toll and the interleukin-1 receptor. Cell. 1994;78(6):1101-15.
Kovalenko AG. Protein-carbohydrate interactions in the realization of plant resistance to viruses. Mikrobiol Zh. 1993; 55(6):74-91.
Kovalenko OG, Telegeeva TA, Shtakun AV, Pogorila ZO. Influence of some mono- and polysaccharides on localization of virus infection and on induced virus resistance in plants. Biopolym Cell. 2000; 16(1):53-9.
Kovalenko OG, Telegeeva TA, Kyrychenko AM. Discovery of lectin-like proteins in the tobacco and datura plants, infected by tobacco mosaic virus. Biopolym Cell. 2003; 19(2):164-8.
Kovalenko OH, Kyrychenko AM, Teleheieva TA. [Effect of TMV-infection on protein and carbohydrate content in hypersensitive tobacco plants and their antiviral and hemagglutinating activity]. Ukr Biokhim Zh. 2003;75(2):103-8.
Bradford MM. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal Biochem. 1976;72:248-54.
Zakharova IYa, Kosenko LB. Methods for studying microbial polysaccharides. Kiev: Naukova Dumka. 1982. 163 p.
Kovalenko AG, Barkalova AA. Production of biologically active mannan containing preparations from yeast. Mikrobiol Zh. 1995; 57(3):41-7.
Whistler RL, Wolfrom ML. Methods in Carbohydrate Chemistry Academic Press, New York-London 1964.
Kovalenko AG, Kovalenko EA, Grabina TD. Lectine-binding and antiviral activity of the yeast mannanes in supersensitive plants. Mikrobiol Zh. 1991; 53(2):83-9.
Casalongue C, Lezica R. Potato lectin: A cell-wall glucoprotein. Plant Cell Physiol. 1986; 26(8): 1533-9.
Khomutovskiy OA, Lutsik MD, Perederey OF. Electronic histochemistry cell membrane receptors. Kiev: Naukova Dumka, 1986. 167 p.
Turkova J. Affinity Chromatography. Elsevier Science Technol, 1978.
Allan AC, Lapidot M, Culver JN, Fluhr R. An early tobacco mosaic virus-induced oxidative burst in tobacco indicates extracellular perception of the virus coat protein. Plant Physiol. 2001;126(1):97-108.
