Biopolym. Cell. 1996; 12(4):73-83.
Лизогения у фага MS2. Экспрессия МS2-специфической информации сегрегантами нестабильных трансдуцирующих фагов Р1 и λ
1Перерва Т. П., 1Мирюта А. Ю., 1Вудмаска М. И., 2Алексеенко И. П.
  1. Институт молекулярной биологии и генетики НАН Украины
    ул. Академика Заболотного, 150, Киев, Украина, 03680
  2. Институт ветеринарной медицины НААН Украины
    Ул. Донецкая, 30, Киев, Украина, 03151

Abstract

Генетическими методами получена группа фагов, последовательно выщепляющихся друг из друга и ведущих свое происхождение в одном случае от Р1-подобной трансдуцирующей плазмиды, а в другом – от трансдуцирующего мутанта фага λ (λ-4). Хромосома последнего содержит фрагмент ДНК М82-индуцированного мутанта Escherichia соli. Серологические свойства конечных фаговых вариантов свидетельствуют об экспрессии генетической информации фага MS2 и подтверждают ее присутствие в составе всех предшествующих фаговых форм

References

[1] Pererva TP. Resistance to phage MS2 induced in E. coli by infection with that phage. Tsitol Genet. 1977;11(1):3-9.
[2] Pererva TP, Malyuta SS. The system of E. coli MS2-induced mutants on F-factor. Molek Biol (Kiev). 1984; Iss 38:81-90.
[3] Pererva TP, Miryuta NYu, Miryuta AYu. MS2 phage lysogeny. Phage-specific RNA synthesis on cell DNA. Biopolym Cell. 1993; 9(1):45-50.
[4] Pererva TP, Mirjuta NYu, Mirjuta AYu, Woodmaska MI, Zherebtsova EN. Lysogeny by MS2 phage. Analysis of a recombinant plasmid containing MS2 RNA-like sequence. Biopolym Cell. 1995; 11(1):61-5.
[5] Zyskind JW, Smith DW. DNA replication, the bacterial cell cycle, and cell growth. Cell. 1992;69(1):5-8.
[6] Asai T, Kogoma T. D-loops and R-loops: alternative mechanisms for the initiation of chromosome replication in Escherichia coli. J Bacteriol. 1994;176(7):1807-12.
[7] Adams M. Bacteriophages. New York; London: im. Publ. Inc., 1951.
[8] Maniatis T, Fritsch EF, Sambrook J. Molecular cloning: a laboratory manual. New York: Cold Spring Harbor Lab, 1982; 545 p.
[9] Davis RW, Simon M, Davidson N. Electron microscope heteroduplex methods for mapping regions of base sequence homology in nucleic acids. Nucleic Acids, Part D. 1971;413–28.
[10] Luria SE, Adams JN, Ting RC. Transduction of lactose-utilizing ability among strains of E. coli and S. dysenteriae and the properties of the transducing phage particles. Virology. 1960;12:348-90.
[11] Pererva TP, Buch IG, Martynov SA, Malyuta SS. Transfer attributes of impaired growth, division and functional properties of membranes and membrane of Escherichia coli using other strains P1-like plasmids and transducing phages lambda and P1. Molek Biol (Kiev). 1984. Iss 38:90-5.
[12] Lane D, Hill D, Caughey P, Gunn P. The mini-F primary origin. Sequence analysis and multiple activities. J Mol Biol. 1984;180(2):267-82.
[13] Pererva TP, Buch IG, Danilenko TS, Martynov SA, A-4 phage transducing properties. Viruses and virus diseases. 1988. Iss. 16: 46-9.
[14] Daniels DI, Schroeder JI, Szybalski W, Blathner FR. A molecular map of bacteriophage lambda. Genetic Maps. 1982. 2: 1-9.
[15] Pickett GG, Peabody DS. Encapsidation of heterologous RNAs by bacteriophage MS2 coat protein. Nucleic Acids Res. 1993;21(19):4621-6.